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红串红球菌手性醇脱氢酶的克隆表达、酶学性质及催化应用研究

摘要第4-7页
ABSTRACT第7-10页
第一章 绪论第13-32页
    1.1 2,3-丁二醇的性质第13页
    1.2 2,3-丁二醇的生产方法第13-16页
        1.2.1 化学法生产2,3-丁二醇第14页
        1.2.2 微生物法生产2,3-丁二醇第14-16页
    1.3 醇脱氢酶的分类及特征第16-19页
        1.3.1 含Fe~(2+)醇脱氢酶的结构及功能特点第17页
        1.3.2 含Zn~(2+)醇脱氢酶的结构及功能特点第17-18页
        1.3.3 不含金属离子醇脱氢酶的结构及功能特点第18-19页
    1.4 2,3-丁二醇脱氢酶第19-23页
        1.4.1 (2S,3S)-2,3-丁二醇脱氢酶第20-21页
        1.4.2 (2R,3R)-2,3-丁二醇脱氢酶第21-22页
        1.4.3 meso-2,3-丁二醇脱氢酶第22-23页
    1.5 辅酶循环体系的构建第23-26页
        1.5.1 双底物偶联法辅酶再生第24-25页
        1.5.2 双酶偶联法辅酶再生第25-26页
    1.6 本论文的研究背景、内容及意义第26-27页
    参考文献第27-32页
第二章 醇脱氢酶ReBDH-S与ReBDH-M的基因克隆与表达第32-53页
    2.1 引言第32-33页
    2.2 实验材料第33-35页
        2.2.1 菌种及质粒载体第33页
        2.2.2 试剂与材料第33-34页
        2.2.3 培养基第34页
        2.2.4 缓冲液及洗脱液第34页
        2.2.5 主要仪器第34-35页
    2.3 试验方法第35-40页
        2.3.1 红串红球菌发酵及终端产物检测第35-36页
        2.3.2 目的基因的克隆第36-38页
        2.3.3 重组质粒pEASY-E1-bdh的表达第38-39页
        2.3.4 重组蛋白的纯化第39页
        2.3.5 重组蛋白天然分子量的检测第39页
        2.3.6 重组蛋白ReBDH-S与ReBDH-M结构分析第39-40页
    2.4 结果与分析第40-50页
        2.4.1 R.erythropolis WZ010发酵终端产物的检测第40-41页
        2.4.2 ReBDH-S与ReBDH-M的基因克隆及分子特征第41-42页
        2.4.3 ReBDH-S与ReBDH-M的表达及纯化第42-45页
        2.4.4 重组ReBDH-S与ReBDH-M天然分子量的测定第45-46页
        2.4.5 重组蛋白一、二、三级结构分析第46-50页
    2.5 本章讨论与小结第50-51页
    参考文献第51-53页
第三章 醇脱氢酶ReBDH-S与ReBDH-M的酶学性质表征第53-72页
    3.1 引言第53-54页
    3.2 实验材料第54-56页
        3.2.1 菌种第54页
        3.2.2 试剂与材料第54页
        3.2.3 培养基第54页
        3.2.4 缓冲液及洗脱液第54-55页
        3.2.5 主要仪器第55-56页
    3.3 试验方法第56-58页
        3.3.1 重组酶活力的测定第56页
        3.3.2 重组酶的酶学性质第56-57页
        3.3.3 重组酶立体选择性的确立第57-58页
    3.4 结果与分析第58-69页
        3.4.1 重组ReBDH-S与REBDH-M的底物特异性第58-61页
        3.4.2 温度及pH值对重组酶的影响第61-62页
        3.4.3 金属离子及有机助溶剂对酶活力的影响第62-66页
        3.4.4 重组酶ReBDH-S与ReBDH-M的动力学参数第66-67页
        3.4.5 重组酶ReBDH-S与ReBDH-M立体选择性的确立第67-69页
    3.5 本章讨论与小结第69-70页
    参考文献第70-72页
第四章 重组酶在生物催化方面的应用探索第72-88页
    4.1 引言第72-73页
    4.2 实验材料第73-74页
        4.2.1 菌种及质粒载体第73页
        4.2.2 培养基第73-74页
        4.2.3 缓冲液第74页
        4.2.4 试剂与材料第74页
        4.2.5 主要仪器第74页
    4.3 实验方法第74-78页
        4.3.1 甲酸脱氢酶FDHCB和FDHP101的制备第75页
        4.3.2 酶法合成手性醇第75-77页
        4.3.3 酶法不对称合成手性醇的结果检测第77-78页
    4.4 结果与分析第78-84页
        4.4.1 FDH的制备第78-80页
        4.4.2 手性醇的不对称合成第80-84页
    4.5 本章讨论与小结第84-86页
    参考文献第86-88页
第五章 总结与展望第88-91页
    5.1 结论第88-89页
    5.2 展望第89-91页
攻读硕士学位期间论文发表情况第91-92页
致谢第92页

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