| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略语表 | 第6-12页 |
| 第一章 课题综述 | 第12-63页 |
| 1.1 异硫氰酸酯类化合物(ITCs) | 第12-46页 |
| 1.1.1 ITCs的发现、分布及其转化形成机制 | 第12-16页 |
| 1.1.2 ITCs的化学性质和生物活性研究 | 第16-43页 |
| 1.1.2.1 ITCs的化学性质 | 第16-18页 |
| 1.1.2.2 ITCs的生物活性研究 | 第18-43页 |
| 1.1.3 简单介绍ITCs的合成方法 | 第43-46页 |
| 1.2 细胞氧化损伤与保护 | 第46-54页 |
| 1.2.1 细胞的氧化损伤机制 | 第46-50页 |
| 1.2.2 药物代谢酶——Ⅱ相代谢酶 | 第50-54页 |
| 1.3 课题意义 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 第二章 ITCs通过亲电加成依赖的活性氧的产生诱导乳腺癌细胞凋亡和周期阻滞 | 第63-83页 |
| 2.1 摘要 | 第63页 |
| 2.2 引言 | 第63-64页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第64-72页 |
| 2.3.1 ITCs对于MDA-MB-231乳腺癌细胞的增殖活性评价 | 第64-66页 |
| 2.3.2 ITCs诱导MDA-MB-231乳腺癌细胞周期阻滞活性研究 | 第66-67页 |
| 2.3.3 ITCs对于MDA-MB-231乳腺癌细胞凋亡诱导活性评价 | 第67-69页 |
| 2.3.4 ITCs诱导MDA-MB-231乳腺癌细胞内ROS含量的变化 | 第69页 |
| 2.3.5 ITCs对于MDA-MB-231乳腺癌细胞凋亡和周期相关蛋白含量的影响 | 第69-71页 |
| 2.3.6 本章小结 | 第71-72页 |
| 2.4 实验部分 | 第72-82页 |
| 2.4.1 材料 | 第72-74页 |
| 2.4.1.1 主要材料和仪器 | 第72页 |
| 2.4.1.2 主要仪器 | 第72-73页 |
| 2.4.1.3 主要溶液配制 | 第73-74页 |
| 2.4.1.4 药物配制及细胞培养 | 第74页 |
| 2.4.2 ITCs的合成 | 第74-75页 |
| 2.4.3 细胞存活率的测定 | 第75-76页 |
| 2.4.4 细胞内活性氧(ROS)含量的测定 | 第76-77页 |
| 2.4.5 细胞周期的阻滞效果测定 | 第77-78页 |
| 2.4.6 ITCs对于细胞凋亡的诱导作用 | 第78-80页 |
| 2.4.6.1 细胞形态学凋亡的评价 | 第78-79页 |
| 2.4.6.2 双染法测定细胞凋亡效果 | 第79-80页 |
| 2.4.7 Western blotting实验测定细胞凋亡相关蛋白含量的变化 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-83页 |
| 第三章 ITCs对于甲萘醌诱导的细胞损伤的保护作用研究 | 第83-91页 |
| 3.1 摘要 | 第83页 |
| 3.2 引言 | 第83-84页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第84-87页 |
| 3.3.1 ITCs对于正常肝脏细胞L02的毒性及其保护作用 | 第84-85页 |
| 3.3.2 细胞内典型Ⅱ相代谢酶含量的变化 | 第85-86页 |
| 3.3.3 细胞内Nrf2含量的变化及其转位效果 | 第86页 |
| 3.3.4 本章小结 | 第86-87页 |
| 3.4 实验部分 | 第87-90页 |
| 3.4.1 材料与试剂、仪器 | 第87页 |
| 3.4.2 ITCs对于正常肝脏细胞L02的毒性及其保护作用 | 第87-88页 |
| 3.4.2.1 ITCs对于正常肝脏细胞L02的毒性 | 第87-88页 |
| 3.4.2.2 ITCs对于甲萘醌诱导的细胞损伤的保护效果 | 第88页 |
| 3.4.3 细胞内典型Ⅱ相代谢酶含量的变化 | 第88-89页 |
| 3.4.4 细胞内Nrf2含量的变化及其转位效果 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-91页 |
| 在学期间的研究成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
