| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-15页 |
| 1 绪论 | 第15-31页 |
| 1.1 血液及其成分检测 | 第15-20页 |
| 1.1.1 血液概述 | 第15-16页 |
| 1.1.2 血液成分检测的意义 | 第16-17页 |
| 1.1.3 血液成分检测的方法 | 第17-20页 |
| 1.2 纳米电化学生物传感器 | 第20-22页 |
| 1.2.1 纳米电化学生物传感器的定义及分类 | 第20-21页 |
| 1.2.2 纳米电化学生物传感器的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.3 纳米生物医用材料 | 第22-26页 |
| 1.3.1 纳米生物医用材料的定义 | 第22-23页 |
| 1.3.2 纳米生物医用金属材料 | 第23页 |
| 1.3.3 纳米生物医用无机材料 | 第23-25页 |
| 1.3.4 纳米生物医用高分子材料 | 第25页 |
| 1.3.5 纳米生物医用复合材料 | 第25-26页 |
| 1.4 抗生物污垢技术 | 第26-28页 |
| 1.4.1 生物污垢的定义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 材料或器械表面抗生物污垢技术 | 第27-28页 |
| 1.5 本论文的研究目的和主要研究内容 | 第28-31页 |
| 1.5.1 本论文的研究目的 | 第28-29页 |
| 1.5.2 本论文的主要研究内容 | 第29-31页 |
| 2 聚氨酯-Pluronic F127纳米粒子的制备及其在全血中的检测应用 | 第31-49页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验部分 | 第32-35页 |
| 2.2.1 仪器及试剂 | 第32页 |
| 2.2.2 纳米粒子的合成 | 第32-33页 |
| 2.2.3 纳米粒子的表征 | 第33页 |
| 2.2.4 抗生物污垢性能的评价 | 第33-35页 |
| 2.2.4.1 凝血时间实验 | 第33-34页 |
| 2.2.4.2 补体激活和血小板激活的测定 | 第34页 |
| 2.2.4.3 全血粘附实验 | 第34页 |
| 2.2.4.4 圆二色谱实验 | 第34-35页 |
| 2.2.5 纳米粒子的生物传感器的构建、性能评价以及对全血中葡萄糖的检测 | 第35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-48页 |
| 2.3.1 PU-F127纳米粒子的表征 | 第35-38页 |
| 2.3.1.1 透射电镜分析 | 第35-36页 |
| 2.3.1.2 红外光谱分析 | 第36-38页 |
| 2.3.2 抗生物污垢性能评价 | 第38-42页 |
| 2.3.2.1 APTT/PT/TT凝血时间数据分析 | 第38页 |
| 2.3.2.2 补体激活和血小板激活实验 | 第38页 |
| 2.3.2.3 全血粘附评价 | 第38-39页 |
| 2.3.2.4 蛋白相容性评价 | 第39-42页 |
| 2.3.3 GOx/(PU-F127)/GCE生物传感器的条件优化实验 | 第42-43页 |
| 2.3.4 GOx/(PU-F127)/GCE生物传感器的的直接电化学 | 第43-44页 |
| 2.3.5 GOx/(PU-F127)/GCE生物传感器对葡萄糖的电催化 | 第44-46页 |
| 2.3.6 GOx/(PU-F127)/GCE生物传感器在全血中的线性 | 第46页 |
| 2.3.7 GOx/(PU-F127)/GCE生物传感器的稳定性和抗干扰性 | 第46-48页 |
| 2.3.8 实际样品检测 | 第48页 |
| 2.4 结论 | 第48-49页 |
| 3 聚吡咯-Pluronic F127纳米粒子的制备及其在全血检测中的应用 | 第49-62页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 实验部分 | 第50-52页 |
| 3.2.1 仪器及试剂 | 第50页 |
| 3.2.2 纳米粒子的合成 | 第50页 |
| 3.2.3 纳米粒子的表征 | 第50-51页 |
| 3.2.4 抗生物污垢性能的评价 | 第51页 |
| 3.2.4.1 凝血时间实验 | 第51页 |
| 3.2.4.2 补体激活和血小板激活实验 | 第51页 |
| 3.2.4.3 圆二色谱实验 | 第51页 |
| 3.2.5 生物传感器的构建、性能评价以及对全血中葡萄糖的检测 | 第51-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-61页 |
| 3.3.1 PPy-F127 NPs的表征 | 第52-53页 |
| 3.3.1.1 透射电镜及能谱分析 | 第52-53页 |
| 3.3.1.2 紫外可见光谱分析 | 第53页 |
| 3.3.2 抗生物污垢性能评价 | 第53-57页 |
| 3.3.2.1 APTT/PT/TT凝血时间数据分析 | 第53-54页 |
| 3.3.2.2 补体激活和血小板激活实验 | 第54-55页 |
| 3.3.2.3 蛋白相容性评价 | 第55-57页 |
| 3.3.3 GOx/(PPy-F127)/APTES/GCE生物传感器的直接电化学 | 第57-58页 |
| 3.3.4 GOx/(PPy-F127)/APTES/GCE生物传感器对葡萄糖的电催化 | 第58-60页 |
| 3.3.5 GOx/(PPy-F127)/APTES/GCE生物传感器的稳定性和抗干扰性 | 第60-61页 |
| 3.3.6 实际样品检测 | 第61页 |
| 3.4 结论 | 第61-62页 |
| 4 羧基化超支化聚酯纳米粒子的制备及其对全血中凝血酶的检测 | 第62-81页 |
| 4.1 引言 | 第62-63页 |
| 4.2 实验部分 | 第63-67页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第63页 |
| 4.2.2 HBPE-CA NPs的合成 | 第63-64页 |
| 4.2.3 HBPE-CA NPs的表征 | 第64页 |
| 4.2.4 抗生物污垢性能的评价 | 第64-65页 |
| 4.2.4.1 凝血时间实验 | 第64-65页 |
| 4.2.4.2 补体激活和血小板激活实验 | 第65页 |
| 4.2.5 构建基于HBPE-CA NPs的适体传感器和凝血酶的检测 | 第65-66页 |
| 4.2.5.1 HBPE-CA NPs修饰电极的制备 | 第65页 |
| 4.2.5.2 凝血酶和TBA在HBPE-CA NPs修饰的电极上的固定 | 第65-66页 |
| 4.2.6 适体传感器的生物相容性评价 | 第66页 |
| 4.2.7 电化学检测 | 第66-67页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第67-80页 |
| 4.3.1 HBPE-CA NPs的表征 | 第67-69页 |
| 4.3.1.1 核磁共振氢谱分析 | 第67-68页 |
| 4.3.1.2 电喷雾质谱分析 | 第68-69页 |
| 4.3.1.3 TEM分析 | 第69页 |
| 4.3.2 抗生物污垢性能评价 | 第69-72页 |
| 4.3.2.1 APTT/PT/TT凝血时间数据分析 | 第69-70页 |
| 4.3.2.2 补体激活和血小板激活实验 | 第70-72页 |
| 4.3.3 TBA/(HBPE-CA)的表征 | 第72-75页 |
| 4.3.4 适体传感器的电化学表征 | 第75-76页 |
| 4.3.5 孵育时间的影响 | 第76-77页 |
| 4.3.6 Thrombin/TBA/(HBPE-CA)/ITO适体传感器的电化学研究 | 第77-78页 |
| 4.3.7 Thrombin/TBA/(HBPE-CA)/ITO适体传感器的特异性检测 | 第78-79页 |
| 4.3.8 适体传感器的稳定性和可重复使用性 | 第79页 |
| 4.3.9 实际样品分析 | 第79-80页 |
| 4.4 结论 | 第80-81页 |
| 5 羧基化超支化聚酯纳米粒子对全血中癌胚抗原的检测 | 第81-93页 |
| 5.1 引言 | 第81页 |
| 5.2 实验部分 | 第81-83页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第81-82页 |
| 5.2.2 CS-Au修饰的电极的制备 | 第82页 |
| 5.2.3 电化学免疫传感器的制备 | 第82-83页 |
| 5.2.4 电极表面抗生物污垢性能的评价 | 第83页 |
| 5.2.5 电化学检测 | 第83页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第83-92页 |
| 5.3.1 HBPE-CA NPs的表征 | 第84页 |
| 5.3.1.1 Zeta电位分析 | 第84页 |
| 5.3.1.2 红外光谱分析 | 第84页 |
| 5.3.2 抗生物污垢性能评价 | 第84-85页 |
| 5.3.3 免疫传感器的条件优化实验 | 第85-87页 |
| 5.3.4 扫速对(HBPE-CA)/CS-Au/GCE的影响 | 第87-88页 |
| 5.3.5 免疫传感器的电化学表征 | 第88-89页 |
| 5.3.6 免疫传感器的性能研究 | 第89-91页 |
| 5.3.7 免疫传感器的特异性检测 | 第91页 |
| 5.3.8 免疫传感器的稳定性和可重复性 | 第91页 |
| 5.3.9 实际样品分析 | 第91-92页 |
| 5.4 结论 | 第92-93页 |
| 6 聚吡咯-Pluronic F127-金纳米粒子对全血中癌细胞的检测 | 第93-107页 |
| 6.1 引言 | 第93-95页 |
| 6.2 实验部分 | 第95-97页 |
| 6.2.1 仪器与试剂 | 第95页 |
| 6.2.2 PPy-F127-Au纳米粒子的合成 | 第95页 |
| 6.2.3 纳米粒子的表征 | 第95-96页 |
| 6.2.4 抗生物污垢性能的评价 | 第96-97页 |
| 6.2.4.1 凝血时间实验 | 第96页 |
| 6.2.4.2 补体激活和血小板激活实验 | 第96页 |
| 6.2.4.3 细胞毒性研究 | 第96页 |
| 6.2.4.4 水接触角测试 | 第96-97页 |
| 6.2.5 细胞培养和细胞处理 | 第97页 |
| 6.2.6 细胞传感器制备 | 第97页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第97-105页 |
| 6.3.1 PPy-F127 NPs的表征 | 第97-99页 |
| 6.3.1.1 透射电镜及能谱分析 | 第97-98页 |
| 6.3.1.2 紫外可见光谱分析 | 第98页 |
| 6.3.1.3 红外光谱分析 | 第98-99页 |
| 6.3.2 抗生物污垢性能评价 | 第99-101页 |
| 6.3.2.1 APTT/PT/TT凝血时间数据分析 | 第99-100页 |
| 6.3.2.2 补体激活和血小板激活实验 | 第100-101页 |
| 6.3.3 细胞毒性研究 | 第101页 |
| 6.3.4 水接触角数据分析 | 第101-102页 |
| 6.3.5 细胞传感器的孵化时间优化实验 | 第102-103页 |
| 6.3.6 免疫传感器的电化学表征 | 第103-105页 |
| 6.4 结论 | 第105-107页 |
| 7 结论 | 第107-109页 |
| 7.1 结论 | 第107-108页 |
| 7.2 论文的主要创新点 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-135页 |
| 附录 | 第135-137页 |
