| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 缩略语/符号说明(按字母顺序) | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-18页 |
| 研究现状、成果 | 第11-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 1.对象和方法 | 第18-33页 |
| 1.1 主要试剂和仪器 | 第18-20页 |
| 1.1.1 主要试剂 | 第18-20页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第20页 |
| 1.2 方法 | 第20-33页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.2.2 细胞免疫荧光染色检测Robo4蛋白表达 | 第21-22页 |
| 1.2.3 western blot检测细胞Robo4蛋白表达 | 第22-24页 |
| 1.2.3.1 Robo4蛋白提取 | 第22页 |
| 1.2.3.2 蛋白浓度测定 | 第22页 |
| 1.2.3.3 上样样品制备 | 第22-23页 |
| 1.2.3.4 转膜 | 第23页 |
| 1.2.3.5 蛋白质检测 | 第23-24页 |
| 1.2.3.6 凝胶成像分析 | 第24页 |
| 1.2.4 western blot检测细胞Slit2蛋白表达 | 第24-26页 |
| 1.2.4.1 Slit2蛋白提取 | 第24页 |
| 1.2.4.2 蛋白浓度测定 | 第24页 |
| 1.2.4.3 上样样品制备 | 第24-25页 |
| 1.2.4.4 转膜 | 第25页 |
| 1.2.4.5 蛋白质检测 | 第25-26页 |
| 1.2.4.6 凝胶成像分析 | 第26页 |
| 1.2.5 western blot检测细胞VE-cadherin蛋白表达 | 第26-28页 |
| 1.2.5.1 VE-cadherin蛋白提取 | 第26页 |
| 1.2.5.2 蛋白浓度测定 | 第26页 |
| 1.2.5.3 上样样品制备 | 第26-27页 |
| 1.2.5.4 转膜 | 第27页 |
| 1.2.5.5 蛋白质检测 | 第27-28页 |
| 1.2.5.6 凝胶成像分析 | 第28页 |
| 1.2.6 RT-PCR检测细胞Robo4mRNA表达 | 第28-29页 |
| 1.2.6.1 提取总RNA | 第28页 |
| 1.2.6.2 cDNA合成（逆转录） | 第28-29页 |
| 1.2.6.3 定量PCR检测 | 第29页 |
| 1.2.7 RT-PCR检测细胞Slit2m RNA表达 | 第29-31页 |
| 1.2.7.1 提取总RNA | 第29-30页 |
| 1.2.7.2 cDNA合成（逆转录） | 第30页 |
| 1.2.7.3 定量PCR检测 | 第30-31页 |
| 1.2.8 RT-PCR检测细胞VE-cadherinmRNA表达 | 第31-32页 |
| 1.2.8.1 提取总RNA | 第31页 |
| 1.2.8.2 cDNA合成（逆转录） | 第31页 |
| 1.2.8.3 定量PCR检测 | 第31-32页 |
| 1.2.9 统计学方法 | 第32-33页 |
| 2.结果 | 第33-44页 |
| 2.1 HUVECs形态观察 | 第33页 |
| 2.2 细胞免疫荧光染色检测 HUVECs Robo4 蛋白表达 | 第33-35页 |
| 2.3 Western blot 检测 HUVECs Robo4 蛋白表达 | 第35-37页 |
| 2.4 Western blot 检测 HUVECs Slit2 蛋白表达 | 第37-39页 |
| 2.5 Western blot 检测 HUVECs VE-cadherin 蛋白表达 | 第39-40页 |
| 2.6 RT-PCR 检测 HUVECs Robo4 m RNA 表达 | 第40-41页 |
| 2.7 RT-PCR 检测 HUVECs Slit2 m RNA 表达 | 第41-42页 |
| 2.8 RT-PCR 检测 HUVECs VE-cadherin m RNA 表达 | 第42-44页 |
| 3.讨论 | 第44-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-62页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第62-63页 |
| 综述 Robo4信号的发生发展及在病理性血管生成中的作用 | 第63-75页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76页 |
