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聚乙二醇1000维生素E琥珀酸酯修饰脂质体作为阿霉素载体的研究

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
前言第12-13页
第1章 TPGS修饰的阿霉素脂质体制备第13-23页
    1.1 仪器与材料第13页
        1.1.1 试剂第13页
        1.1.2 仪器第13页
    1.2 方法与操作第13-16页
        1.2.1 脂质体制备方法的选择第13-14页
            1.2.1.1 逆相蒸发法制备阿霉素第13-14页
            1.2.1.2 薄膜法制备阿霉素脂质体第14页
            1.2.1.3 硫酸铵梯度法制备阿霉素脂质体第14页
        1.2.2 紫外分光光度测定阿霉素的含量第14页
            1.2.2.1 标准曲线的绘制第14页
            1.2.2.2 方法精密度第14页
            1.2.2.3 加样回收率第14页
        1.2.3 阳离子交换树脂柱测定包封率第14-15页
            1.2.3.1 阳离子树脂的活化第15页
            1.2.3.2 阳离子树脂对游离阿霉素的吸附能力考察第15页
            1.2.3.3 脂质体包封率的测定第15页
        1.2.4 阿霉素脂质体制备工艺考察第15-16页
            1.2.4.1 空白脂质体的制备第15页
            1.2.4.2 孵育温度对包封率的影响第15-16页
            1.2.4.3 药脂比对包封率的影响第16页
            1.2.4.4 孵育时间对包封率的影响第16页
    1.3 结果和讨论第16-21页
        1.3.1 阿霉素脂质体制备方法的选择第16页
        1.3.2 紫外分光光度测定阿霉素的含量第16-18页
            1.3.2.1 阿霉素的紫外标准曲线第16-17页
            1.3.2.2 日内、日间精密度第17页
            1.3.2.3 加样回收率第17-18页
        1.3.3 阳离子交换吸附测定脂质体的包封率第18页
        1.3.4 脂质体制备工艺的考察第18-21页
            1.3.4.1 孵育温度对包封率的影响第18-20页
            1.3.4.2 药脂比对包封率的影响第20页
            1.3.4.3 孵育时间对包封率的影响第20-21页
            1.3.4.4 最终处方和制备工艺第21页
    1.4 小结第21-23页
第2章 TPGS修饰的阿霉素脂质体理化性质考察第23-35页
    2.1 仪器与材料第23-24页
        2.1.1 试剂第23页
        2.1.2 仪器第23-24页
    2.2 方法和操作第24-25页
        2.2.1 脂质体形态的观察第24页
        2.2.2 粒径分布和Zeta电位第24页
        2.2.3 DSC测定成份的相互作用第24页
        2.2.4 稳定常数的测定第24页
        2.2.5 体外释放实验第24-25页
            2.2.5.1 荧光分光光度法测定阿霉素含量第25页
            2.2.5.2 体外释放方案第25页
        2.2.6 泄漏率考察第25页
        2.2.7 脂质体在血清中的稳定性考察第25页
    2.3 结果和讨论第25-33页
        2.3.1 脂质体的形态观察第25-26页
        2.3.2 脂质体的粒径分布第26-28页
        2.3.3 Zeta电位第28页
        2.3.4 TPGS对磷脂双分子层的影响第28-29页
        2.3.5 稳定常数第29-30页
        2.3.6 体外释放试验第30-32页
            2.3.6.1 阿霉素的荧光标准曲线第30页
            2.3.6.2 阿霉素脂质体体外释放对照第30-32页
        2.3.7 泄漏率试验第32页
        2.3.8 血清中稳定性第32-33页
    2.4 小结第33-35页
第3章 TPGS修饰的阿霉素脂质体的药动学第35-44页
    3.1 仪器与材料第35-36页
        3.1.1 试剂第35页
        3.1.2 仪器第35-36页
        3.1.3 实验动物第36页
    3.2 方法和操作第36-37页
        3.2.1 HPLC测定血浆中阿霉素的含量第36-37页
            3.2.1.1 色谱条件第36页
            3.2.1.2 阿霉素储备液第36页
            3.2.1.3 内标溶液的配置第36页
            3.2.1.4 阿霉素标准储备液第36页
            3.2.1.5 血浆样品处理第36页
            3.2.1.6 血浆样品标准曲线的绘制第36-37页
            3.2.1.7 精密度和回收率考察第37页
        3.2.2 给药和采血方案第37页
        3.2.3 药动学数据处理第37页
    3.3 结果和讨论第37-43页
        3.3.1 HPLC用于血浆中阿霉素的含量测定第37-40页
            3.3.1.1 色谱条件优化第38页
            3.3.1.2 方法专属性第38-39页
            3.3.1.3 血浆样品的标准曲线第39页
            3.3.1.4 精密度和回收率考察第39-40页
        3.3.2 药动学参数讨论第40-43页
    3.4 小结第43-44页
第4章 TPGS修饰阿霉素脂质体对MCF-7和MCF-7/ADR细胞株的抗肿瘤活性第44-61页
    4.1 仪器与材料第44-45页
        4.1.1 试剂第44页
        4.1.2 仪器第44-45页
        4.1.3 细胞株第45页
    4.2 方法和操作第45-48页
        4.2.1 细胞培养第45页
        4.2.2 HPLC测定细胞内阿霉素含量第45-46页
            4.2.2.1 HPLC色谱条件第45页
            4.2.2.2 方法专属性第45页
            4.2.2.3 细胞样品处理第45页
            4.2.2.4 细胞匀浆的标准曲线的绘制第45-46页
            4.2.2.5 方法精密度第46页
        4.2.3 MCF-7细胞和MCF-7/ADR细胞摄取第46-47页
            4.2.3.1 细胞匀浆蛋白质浓度的测定第46页
            4.2.3.2 药物摄取方案第46-47页
            4.2.3.3 相关代谢产物量随时间的变化第47页
        4.2.4 荧光显微镜观察细胞的药物摄取第47页
        4.2.5 细胞毒性实验第47-48页
            4.2.5.1 含阿霉素的不同处方的系列浓度的配置第47页
            4.2.5.2 MTT试验第47-48页
            4.2.5.3 耐药逆转第48页
    4.3 结果和讨论第48-60页
        4.3.1 HPLC测定细胞内阿霉素浓度第48-50页
            4.3.1.1 色谱行为第48-50页
            4.3.1.2 细胞匀浆的标准曲线第50页
            4.3.1.3 方法精密度第50页
        4.3.2 MCF-7细胞和MCF-7/ADR细胞的体外药物累积第50-54页
        4.3.3 相关代谢产物随时间的变化第54-55页
        4.3.4 荧光显微镜观察细胞对阿霉素的摄取第55-58页
        4.3.5 细胞毒性试验第58-60页
    4.4 小结第60-61页
第5章 TPGS修饰阿霉素脂质体的体内药效学考察第61-67页
    5.1 仪器与材料第61页
        5.1.1 试剂第61页
        5.1.2 仪器第61页
        5.1.3 实验动物和细胞株第61页
    5.2 方法和操作第61-62页
        5.2.1 药效学模型建立第61页
        5.2.2 小鼠分组及给药方案第61-62页
        5.2.3 绘制肿瘤生长曲线第62页
        5.2.4 抑瘤率第62页
        5.2.5 肿瘤病理学检查第62页
    5.3 结果和讨论第62-65页
        5.3.1 肿瘤生长曲线第62-63页
        5.3.2 瘤重抑制率第63-64页
        5.3.3 病理学检查第64-65页
    小结第65-67页
全文总结第67-69页
参考文献第69-74页
TPGS作为药用辅料的应用第74-84页
    参考文献第81-84页
致谢第84页

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