摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-12页 |
主要中英文缩略词表 | 第16-18页 |
第1章 文献综述 | 第18-38页 |
1.1 卵巢癌治疗研究进展 | 第18-19页 |
1.2 肿瘤葡萄糖代谢研究进展 | 第19-25页 |
1.2.1 肿瘤的葡萄糖代谢概述 | 第19页 |
1.2.2 肿瘤的糖酵解过程 | 第19-21页 |
1.2.3 肿瘤葡萄糖代谢相关蛋白 | 第21-23页 |
1.2.4 营养饥饿与肿瘤治疗 | 第23-25页 |
1.3 线粒体动力学研究进展 | 第25-30页 |
1.3.1 线粒体动力学概述 | 第25-26页 |
1.3.2 线粒体分裂融合蛋白 | 第26-28页 |
1.3.3 线粒体动力学与葡萄糖代谢 | 第28-30页 |
1.4 Bcl-2 家族与肿瘤研究进展 | 第30-38页 |
1.4.1 Bcl-2 家族蛋白概述 | 第30-31页 |
1.4.2 Bcl-2 家族蛋白参与调控细胞凋亡 | 第31-33页 |
1.4.3 Bcl-2 家族蛋白与线粒体动力学 | 第33-34页 |
1.4.4 Bcl-2 家族蛋白与肿瘤治疗 | 第34-38页 |
第2章 EBSS通过干扰糖酵解增加人卵巢癌细胞对ABT737凋亡敏感性 | 第38-70页 |
2.1 前言 | 第38-39页 |
2.2 材料和方法 | 第39-52页 |
2.2.1 主要仪器 | 第39-40页 |
2.2.2 主要试剂 | 第40-41页 |
2.2.3 实验方法 | 第41-52页 |
2.3 实验结果 | 第52-65页 |
2.3.1 MTT检测人卵巢癌细胞SKOV3的生存率 | 第52-53页 |
2.3.2 倒置显微镜观察细胞形态 | 第53-54页 |
2.3.3 Hochest 33342 染色观察细胞凋亡 | 第54-55页 |
2.3.4 TUNEL染色 | 第55-56页 |
2.3.5 流式细胞术定量细胞凋亡 | 第56-57页 |
2.3.6 DCFH-DA染色检测ROS | 第57-58页 |
2.3.7 JC-1 染色检测线粒体膜电势 | 第58-59页 |
2.3.8 Western blot检测MOMP及凋亡标志性蛋白Cleaved-Caspase | 第59-60页 |
2.3.9 ATP 含量检测 | 第60-61页 |
2.3.10 乳酸分泌量检测 | 第61-62页 |
2.3.11 实时荧光定量PCR检测糖酵解相关基因GLUT1、LDHA与HKII的表达 | 第62-63页 |
2.3.12 Western blot检测葡萄糖代谢相关蛋白HKII、PDK1与PDHB的表达 | 第63-65页 |
2.4 讨论 | 第65-68页 |
2.5 小结 | 第68-70页 |
第3章 EBSS通过Bcl-2 家族调控线粒体分裂融合增加人卵巢癌细胞对ABT737凋亡敏感性 | 第70-96页 |
3.1 前言 | 第70-71页 |
3.2 材料和方法 | 第71-74页 |
3.2.1 主要仪器 | 第71页 |
3.2.2 主要试剂 | 第71页 |
3.2.3 实验方法 | 第71-74页 |
3.3 实验结果 | 第74-91页 |
3.3.1 线粒体形态观察 | 第74-77页 |
3.3.2 Western blot检测线粒体分裂融合蛋白 | 第77-79页 |
3.3.3 激光共聚焦检测线粒体分裂蛋白Drp1和Fis1在线粒体上定位 | 第79-83页 |
3.3.4 Western blot检测Bcl-2 家族蛋白表达 | 第83-85页 |
3.3.5 构建Si-Bcl-2 质粒并验证转染效率 | 第85-86页 |
3.3.6 MTT检测Si-Bcl-2 联合EBSS与葡萄糖对SKOV3生存率的影响 | 第86-87页 |
3.3.7 Western blot检测Si-Bcl-2 联合EBSS与葡萄糖对Cleaved-Caspase3和cytochrome C的影响 | 第87-88页 |
3.3.8 Western blot检测Si-Bcl-2 联合EBSS与葡萄糖对Bcl-2 家族蛋白的影响 | 第88-89页 |
3.3.9 Western blot检测Si-Bcl-2 联合EBSS与葡萄糖对线粒体分裂融合蛋白的影响 | 第89-91页 |
3.4 讨论 | 第91-93页 |
3.5 小结 | 第93-96页 |
第4章 结论 | 第96-98页 |
参考文献 | 第98-116页 |
作者简介及科研成果 | 第116-118页 |
致谢 | 第118页 |