| 附件 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-24页 |
| 1.1 植物抗病机理研究进展 | 第14-18页 |
| 1.1.1 植物抗病分子机制 | 第14-16页 |
| 1.1.2 植物抗病相关基因研究进展 | 第16-18页 |
| 1.2 植物抗黄萎病的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.1 茄子抗黄萎病研究进展 | 第18页 |
| 1.2.2 水茄抗性相关基因的克隆 | 第18-19页 |
| 1.3 RACE技术的原理及应用 | 第19-22页 |
| 1.3.1 RACE技术的原理 | 第19-21页 |
| 1.3.2 RACE技术的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 病毒诱导基因沉默（VIGS）技术的研究现状 | 第22-23页 |
| 1.4.1 VIGS技术的表达载体 | 第22页 |
| 1.4.2 VIGS技术的优缺点 | 第22-23页 |
| 1.5 研究目的及意义 | 第23页 |
| 1.6 主要的研究内容 | 第23页 |
| 1.7 技术路线 | 第23-24页 |
| 第二章 茄子黄萎病抗性候选基因的荧光定量PCR分析 | 第24-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第24页 |
| 2.1.1 试验材料的准备 | 第24页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 RNA的提取和CDNA第一链的合成 | 第24页 |
| 2.2.2 相对荧光定量PCR | 第24-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-29页 |
| 2.3.1 总RNA的提取 | 第26页 |
| 2.3.2 荧光定量PCR分析 | 第26-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 水茄StUBCc基因的克隆及分析 | 第31-43页 |
| 3.1 试验材料 | 第31页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第31页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 3.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 RNA的提取 | 第31-32页 |
| 3.2.2 StUBCc基因 5′-CDNA序列和 3′-CDNA序列的获得 | 第32页 |
| 3.2.3 StUBCc基因全长序列的获得 | 第32页 |
| 3.2.4 StUBCc基因全长序列的生物信息学分析 | 第32页 |
| 3.2.5 StUBCc基因的荧光定量分析 | 第32-33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-41页 |
| 3.3.1 总RNA的提取 | 第33-34页 |
| 3.3.2 StUBCc基因全长的克隆 | 第34-35页 |
| 3.3.3 StUBCc基因全长的生物信息学分析 | 第35-40页 |
| 3.3.4 StUBCc基因的荧光定量PCR分析 | 第40-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 利用VIGS方法分析StUBCc基因的功能 | 第43-54页 |
| 4.1 试验材料 | 第43页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第43页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 4.2 试验方法 | 第43-47页 |
| 4.2.1 试验材料的处理 | 第43页 |
| 4.2.2 RNA的提取和CDNA第一链的合成 | 第43-44页 |
| 4.2.3 StUBCc基因沉默表达载体的构建 | 第44-45页 |
| 4.2.4 农杆菌介导法侵染水茄幼苗 | 第45-46页 |
| 4.2.5 StUBCc基因沉默的检测 | 第46-47页 |
| 4.3 结果与分析 | 第47-52页 |
| 4.3.1 总RNA的提取 | 第47页 |
| 4.3.2 StUBCc基因沉默干扰片段的扩增 | 第47页 |
| 4.3.3 VIGS表达载体的构建 | 第47-48页 |
| 4.3.4 表达载体转化到农杆菌 | 第48页 |
| 4.3.5 基因沉默后的水茄幼苗表型 | 第48-51页 |
| 4.3.6 StUBCc基因沉默后的荧光定量分析 | 第51页 |
| 4.3.7 黄萎病菌侵染后水茄幼苗表型 | 第51-52页 |
| 4.4 讨论 | 第52-54页 |
| 第五章 全文结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 附录I | 第61页 |
| 附录II | 第61-63页 |
| 附录III | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简历 | 第66页 |
