| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-24页 |
| 1.1 MADS-box转录因子 | 第13-15页 |
| 1.1.1 I型MADS-box转录因子 | 第13-14页 |
| 1.1.2 II型MADS-box转录因子 | 第14-15页 |
| 1.2 开花促进因子AGL24 | 第15-17页 |
| 1.2.1 AGL24基因结构及表达模式 | 第15页 |
| 1.2.2 AGL24与SVP的功能差异 | 第15-16页 |
| 1.2.3 AGL24的一部分功能是在CO下游起作用 | 第16页 |
| 1.2.4 AGL24参与调控花器官发育 | 第16-17页 |
| 1.3 SOC1花期调控的分子机制 | 第17-19页 |
| 1.3.1 SOC1与CO和FT | 第17-18页 |
| 1.3.2 SOC1与FLC和SVP | 第18页 |
| 1.3.3 SOC1与AGL24 | 第18-19页 |
| 1.4 植物启动子的结构特征 | 第19-21页 |
| 1.4.1 转录起始位点 | 第19-20页 |
| 1.4.2 TATA框 | 第20页 |
| 1.4.3 CAAT框 | 第20页 |
| 1.4.4 GC框 | 第20-21页 |
| 1.5 DNA与蛋白质相互作用的研究方法 | 第21-24页 |
| 1.5.1 酵母单杂交系统 | 第21-22页 |
| 1.5.2 双萤光素酶报告基因系统 | 第22-24页 |
| 第二章 引言 | 第24-26页 |
| 第三章 芥菜SOC1启动子全长与AGL24相互作用分析 | 第26-44页 |
| 3.1 材料 | 第26页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第26页 |
| 3.1.2 菌种及载体 | 第26页 |
| 3.1.3 试验试剂 | 第26页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第26页 |
| 3.2 方法 | 第26-37页 |
| 3.2.1 试验试剂的配制 | 第26-28页 |
| 3.2.2 引物设计 | 第28-29页 |
| 3.2.3 AGL24基因的克隆 | 第29-32页 |
| 3.2.4 酵母单杂交系统检测SOC1启动子与AGL24蛋白相互作用 | 第32-35页 |
| 3.2.5 双萤光素酶系统检测SOC1启动子与AGL24蛋白相互作用 | 第35-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-44页 |
| 3.3.1 AGL24基因的克隆 | 第37-38页 |
| 3.3.2 酵母表达载体的构建 | 第38-39页 |
| 3.3.3 重组酵母菌Y1H（pAbAi-SOC1）的AbA背景浓度 | 第39页 |
| 3.3.4 双萤光素酶载体构建 | 第39-41页 |
| 3.3.5 SOC1启动子与AGL24蛋白相互作用鉴定 | 第41-44页 |
| 第四章 芥菜SOC1启动子截短体与AGL24相互作用分析 | 第44-52页 |
| 4.1 材料 | 第44页 |
| 4.2 方法 | 第44-46页 |
| 4.2.1 试验试剂的配制 | 第44页 |
| 4.2.2 引物设计 | 第44-45页 |
| 4.2.3 酵母单杂交系统检测SOC1启动子截短体与AGL24相互作用 | 第45页 |
| 4.2.4 双萤光素酶系统检测SOC1启动子截短体与AGL24相互作用 | 第45-46页 |
| 4.3 结果与分析 | 第46-52页 |
| 4.3.1 重组酵母菌Y1H[pAbAi-SOC1-（1-3）]的AbA背景浓度 | 第46-47页 |
| 4.3.2 SOC1启动子截短体双萤光素酶载体的构建 | 第47-48页 |
| 4.3.3 重组质粒的测序 | 第48-52页 |
| 第五章 芥菜SOC1的启动子CArG-box突变体与AGL24相互作用分析 | 第52-62页 |
| 5.1 材料 | 第52页 |
| 5.2 方法 | 第52-53页 |
| 5.2.1 试验试剂的配制 | 第52页 |
| 5.2.2 引物设计 | 第52页 |
| 5.2.3 酵母单杂交系统检测SOC1启动子突变体片段与AGL24相互作用 | 第52页 |
| 5.2.4 双萤光素酶系统检测SOC1启动子突变体片段与AGL24相互作用 | 第52-53页 |
| 5.3 结果与分析 | 第53-62页 |
| 5.3.1 SOC1启动子CArG-box突变体重组酵母菌的AbA背景浓度 | 第53-55页 |
| 5.3.2 SOC1启动子突变体双萤光素酶载体的构建 | 第55-56页 |
| 5.3.3 重组质粒的测序 | 第56-58页 |
| 5.3.4 SOC1突变体片段与AGL24蛋白相互作用鉴定 | 第58-62页 |
| 第六章 农杆菌介导AGL24转化芥菜 | 第62-69页 |
| 6.1 材料 | 第62页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第62页 |
| 6.1.2 菌种及载体 | 第62页 |
| 6.1.3 试验试剂 | 第62页 |
| 6.1.4 主要仪器 | 第62页 |
| 6.2 方法 | 第62-66页 |
| 6.2.1 试验试剂的配制 | 第62页 |
| 6.2.2 引物设计 | 第62页 |
| 6.2.3 植物表达载体的构建 | 第62-63页 |
| 6.2.4 植物表达载体转化农杆菌 | 第63页 |
| 6.2.5 农杆菌介导转化芥菜 | 第63-64页 |
| 6.2.6 抗性芥菜植株的PCR鉴定 | 第64-65页 |
| 6.2.7 GUS组织化学染色检测 | 第65-66页 |
| 6.3 结果与分析 | 第66-69页 |
| 6.3.1 植物表达载体的构建 | 第66-67页 |
| 6.3.2 农杆菌介导转化法获得抗性植株 | 第67页 |
| 6.3.3 抗性芥菜的PCR鉴定 | 第67-68页 |
| 6.3.4 抗性芥菜的GUS组织化学染色检测 | 第68-69页 |
| 第七章 结论 | 第69-71页 |
| 7.1 克隆了芥菜AGL24基因 | 第69页 |
| 7.2 芥菜SOC1启动子全长能与AGL24蛋白相互作用 | 第69页 |
| 7.3 芥菜SOC1启动子截短体与AGL24蛋白相互作用鉴定 | 第69页 |
| 7.4 芥菜SOC1启动子CArG-box突变体与AGL24相互作用鉴定 | 第69-70页 |
| 7.5 AGL24正义载体成功转化芥菜 | 第70-71页 |
| 第八章 讨论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-80页 |
| 附录 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 项目资助 | 第82-83页 |
| 在校期间发表的学术论文 | 第83页 |
