摘要 | 第4-8页 |
ABSTRACT | 第8-13页 |
缩略语对照 | 第14-20页 |
第一章 综述 | 第20-28页 |
1.1 冬眠期间动物骨骼肌的生理适应性变化 | 第20-22页 |
1.1.1 冬眠时骨骼肌形态质量变化 | 第20-21页 |
1.1.2 冬眠时骨骼肌肌纤维类型转变 | 第21页 |
1.1.3 冬眠时骨骼肌肌肉功能变化 | 第21-22页 |
1.1.4 冬眠时骨骼肌代谢变化 | 第22页 |
1.2 动物骨骼肌钙稳态维持机制 | 第22-25页 |
1.2.1 肌浆网SERCA钙吸收通路 | 第22-24页 |
1.2.2 肌浆网RYR钙释放通路 | 第24-25页 |
1.3 本研究的目的和意义 | 第25-28页 |
第二章 达乌尔黄鼠体重和性别对冬眠阵频率的影响及冬眠期间黄鼠的体温变化 | 第28-36页 |
2.1 引言 | 第28页 |
2.2 实验方法 | 第28-30页 |
2.2.1 实验动物模型 | 第28-29页 |
2.2.2 实验动物分组(1) | 第29页 |
2.2.3 实验动物分组(2) | 第29-30页 |
2.2.4 冬眠期黄鼠体表温度记录 | 第30页 |
2.2.5 数据统计分析 | 第30页 |
2.3 结果 | 第30-32页 |
2.3.1 黄鼠体重对冬眠阵频率的影响 | 第30-31页 |
2.3.2 黄鼠性别对冬眠阵频率的影响 | 第31页 |
2.3.3 冬眠期间黄鼠体表温度的变化 | 第31-32页 |
2.4 讨论 | 第32-36页 |
2.4.1 体重和性别对冬眠阵频率的影响 | 第32-33页 |
2.4.2 冬眠期间黄鼠体温与室温变化的关系 | 第33-36页 |
第三章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌中RYR1 mRNA表达和与Myosin共定位系数变化 | 第36-52页 |
3.1 引言 | 第36页 |
3.2 实验方法 | 第36-43页 |
3.2.1 实验动物模型 | 第37页 |
3.2.2 实验动物分组 | 第37-38页 |
3.2.3 肌肉样品采集 | 第38页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR | 第38-41页 |
3.2.5 免疫荧光组织化学 | 第41-43页 |
3.2.6 数据统计分析 | 第43页 |
3.3 结果 | 第43-49页 |
3.3.1 引物特异性级退火温度检测 | 第43页 |
3.3.2 实时荧光定量PCR反应质量鉴定 | 第43-44页 |
3.3.3 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中RYR1 mRNA相对表达量变化 | 第44-46页 |
3.3.4 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中RYR1与Myosin共定位系数变化 | 第46-49页 |
3.4 讨论 | 第49-52页 |
3.4.1 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌RYR1 mRNA相对表达量变化 | 第49页 |
3.4.2 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌RYR1与Myosin共定位系数变化 | 第49-52页 |
第四章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌中DHPR mRNA表达和与RYR1共定位系数变化 | 第52-62页 |
4.1 引言 | 第52页 |
4.2 实验方法 | 第52-53页 |
4.2.1 实验动物模型及分组 | 第52页 |
4.2.2 实时荧光定量PCR | 第52-53页 |
4.2.3 免疫荧光组织化学 | 第53页 |
4.2.4 数据统计分析 | 第53页 |
4.3 结果 | 第53-59页 |
4.3.1 引物特异性及退火温度检测 | 第53-54页 |
4.3.2 实时荧光定量PCR反应质量鉴定 | 第54-55页 |
4.3.3 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中DHPR mRNA相对表达量变化 | 第55-56页 |
4.3.4 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中RYR1与DHPR共定位系数变化 | 第56-59页 |
4.4 讨论 | 第59-62页 |
4.4.1 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中DHPR mRNA相对表达量变化 | 第59页 |
4.4.2 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中RYR1与DHPR共定位系数变化 | 第59-62页 |
第五章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌中CD38 mRNA和蛋白表达变化 | 第62-76页 |
5.1 引言 | 第62页 |
5.2 实验方法 | 第62-67页 |
5.2.1 实验动物模型及分组 | 第62页 |
5.2.2 实时荧光定量PCR | 第62页 |
5.2.3 Western Blot | 第62-67页 |
5.2.4 数据统计分析 | 第67页 |
5.3 结果 | 第67-73页 |
5.3.1 引物特异性及退火温度检测 | 第67-68页 |
5.3.2 实时荧光定量PCR反应质量鉴定 | 第68-69页 |
5.3.3 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中CD38 mRNA相对表达量变化 | 第69-71页 |
5.3.4 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中CD38蛋白相对表达量变化 | 第71-73页 |
5.4 讨论 | 第73-76页 |
5.4.1 冬眠不同时期黄鼠趾长伸肌中CD38 mRNA和蛋白的相对表达量变化 | 第73-74页 |
5.4.2 冬眠不同时期黄鼠比目鱼肌中CD38 mRNA和蛋白的相对表达量变化 | 第74-76页 |
第六章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌中Caveolin-1 mRNA和蛋白表达变化 | 第76-86页 |
6.1 引言 | 第76页 |
6.2 实验方法 | 第76-77页 |
6.2.1 实验动物模型及分组 | 第76-77页 |
6.2.2 实时荧光定量PCR | 第77页 |
6.2.3 Western Blot | 第77页 |
6.2.4 数据统计分析 | 第77页 |
6.3 结果 | 第77-83页 |
6.3.1 引物特异性及退火温度检测 | 第77-78页 |
6.3.2 实时荧光定量PCR反应质量鉴定 | 第78-79页 |
6.3.3 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中Caveolin-1 mRNA相对表达量变化 | 第79-80页 |
6.3.4 冬眠不同时期黄鼠骨骼肌中Caveolin-1蛋白相对表达量变化 | 第80-83页 |
6.4 讨论 | 第83-86页 |
6.4.1 冬眠不同时期黄鼠趾长伸肌中Caveolin-1 mRNA和蛋白的相对表达量变化 | 第83页 |
6.4.2 冬眠不同时期黄鼠比目鱼肌中Caveolin-1 mRNA和蛋白的相对表达量变化 | 第83-86页 |
结论与创新点 | 第86-88页 |
不足与展望 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-100页 |
攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第100-102页 |
致谢 | 第102页 |