| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩写词 | 第10-15页 |
| 第一章 水稻少分蘖突变体6635的遗传分析和基因定位 | 第15-31页 |
| 1 文献综述 | 第15-24页 |
| 1.1 水稻分蘖的生长发育和分化及其形成规律 | 第15-16页 |
| 1.1.1 水稻分蘖的生长发育和分化 | 第15-16页 |
| 1.1.2 水稻分蘖的形成规律 | 第16页 |
| 1.2 水稻分蘖生长的影响因素 | 第16-18页 |
| 1.2.1 外界环境对水稻分蘖的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.2 植物激素对水稻分蘖的影响 | 第17-18页 |
| 1.3 水稻分蘖的分子机制 | 第18-20页 |
| 1.3.1 水稻分蘖的数量性状研究 | 第18-19页 |
| 1.3.2 水稻分蘖的质量性状研究 | 第19-20页 |
| 1.4 水稻分蘖基因的克隆 | 第20-23页 |
| 1.4.1 MOC1基因 | 第20页 |
| 1.4.2 OsTB1基因 | 第20-22页 |
| 1.4.3 D3基因 | 第22页 |
| 1.4.4 HTD1基因 | 第22页 |
| 1.4.5 HTD2 | 第22-23页 |
| 1.4.6 D53基因 | 第23页 |
| 1.4.7 MOC3/OsWUS/TAB1基因 | 第23页 |
| 1.5 实验目的和意义 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-27页 |
| 2.1 供试材料与田间试验 | 第24页 |
| 2.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.3 定位群体构建与DNA的提取 | 第25页 |
| 2.4 分子标记分析和遗传连锁图谱的构建 | 第25-27页 |
| 3 结果分析 | 第27-29页 |
| 3.1 6635突变体表型分析 | 第27页 |
| 3.2 6635突变体遗传分析 | 第27-28页 |
| 3.3 6635突变体的基因定位 | 第28-29页 |
| 4 讨论 | 第29-31页 |
| 第二章 水稻黄化突变体505ys的基因克隆及功能分析 | 第31-59页 |
| 1 文献综述 | 第31-42页 |
| 1.1 叶色突变的来源及分类 | 第31-32页 |
| 1.2 叶色突变的分子机理研究进展 | 第32-33页 |
| 1.2.1 叶绿素合成代谢途径基因 | 第32页 |
| 1.2.2 叶绿体分化和发育相关基因 | 第32页 |
| 1.2.3 其他途径基因 | 第32-33页 |
| 1.3 萜类化合物的简要概述 | 第33-35页 |
| 1.3.1 萜类化合物的概念 | 第33页 |
| 1.3.2 萜类化合物的分类 | 第33页 |
| 1.3.3 萜类化合物的功能 | 第33-35页 |
| 1.3.3.1 初生代谢产物 | 第34页 |
| 1.3.3.2 次生代谢产物 | 第34-35页 |
| 1.4 萜类化合物的生物合成 | 第35-37页 |
| 1.5 类异戊二烯MEP代谢途径的关键酶的基因克隆 | 第37-41页 |
| 1.5.1 1-脱氧-D-木酮糖-5-磷酸合成酶(DXS) | 第37-38页 |
| 1.5.2 1-脱氧-D-木酮糖-5-磷酸还原异构酶(DXR/IspC) | 第38-39页 |
| 1.5.3 2-甲基-D-赤藓醇-4-磷酸胞苷酰转移酶(CMS/IspD/ygpP)和2 C-甲基赤藓糖醇4-胞苷焦磷酸激酶(CMK/IspE/ychB) | 第39-40页 |
| 1.5.4 4-磷酸-2C-甲基赤藓糖醇4-胞苷焦磷酸合成酶(MCS/IspF/ygbB) | 第40-41页 |
| 1.5.5 1-羟基-2-甲基-2-E-丁烯基-4-焦磷酸合酶(HDS/GCPE/IspG) | 第41页 |
| 1.5.6 1-羟基-2-甲基-2-E-丁烯基-4-焦磷酸还原酶(HDR/lytB/IspH) | 第41页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第41-42页 |
| 2 试验方法和材料 | 第42-49页 |
| 2.1 供试材料与田间试验 | 第42页 |
| 2.2 主要农艺性状调查 | 第42页 |
| 2.3 叶绿素含量测定 | 第42-43页 |
| 2.4 叶绿体的透射电子显微镜观察 | 第43页 |
| 2.5 候选基因的扩增 | 第43页 |
| 2.6 转基因载体的构建 | 第43-46页 |
| 2.6.1 RNA的提取 | 第43-44页 |
| 2.6.2 RNA的反转录 | 第44页 |
| 2.6.3 候选基因cDNA扩增 | 第44页 |
| 2.6.4 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第44-45页 |
| 2.6.5 相关载体的构建 | 第45页 |
| 2.6.6 质粒的提取 | 第45-46页 |
| 2.7 RT-PCR | 第46页 |
| 2.8 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第46-48页 |
| 2.8.1 农杆菌感受态的制备 | 第46页 |
| 2.8.2 农杆菌感受态的转化及菌液保存 | 第46-47页 |
| 2.8.3 所需培养基 | 第47页 |
| 2.8.4 操作步骤 | 第47-48页 |
| 2.9 水稻原生质体诱导与转化 | 第48-49页 |
| 3 结果分析 | 第49-57页 |
| 3.1 505ys表型和农艺性状分析 | 第49-50页 |
| 3.2 突变体505ys不同时期叶绿素含量测定 | 第50页 |
| 3.3 突变体505ys的透射电子显微镜分析 | 第50-51页 |
| 3.4 黄化突变体505ys候选基因的遴选与测序验证 | 第51-52页 |
| 3.5 转基因互补实验 | 第52-55页 |
| 3.6 505YS表达模式分析 | 第55页 |
| 3.7 亚细胞定位 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-59页 |
| 4.1 505YS基因克隆 | 第57页 |
| 4.2 505ys黄化突变体与拟南芥MEP途径相关突变体比较 | 第57-58页 |
| 4.3 MEP途径研究意义 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第70页 |
