| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 缩略词表 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-30页 |
| 1 植物耐盐性及Na~+/H~+逆向转运蛋白基因 | 第18-21页 |
| ·盐对植物的伤害及植物耐盐机理 | 第18-20页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白基因的克隆及结构特征 | 第20-21页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白的功能 | 第21页 |
| ·Na~+/H~+逆向转运蛋白与植物的耐盐性 | 第21页 |
| 2 植物低磷胁迫及磷酸盐转运蛋白基因 | 第21-24页 |
| ·植物低磷胁迫反应 | 第22-23页 |
| ·植物适应低磷胁迫的分子生物学基础 | 第23页 |
| ·植物Pht1家族磷酸盐转运蛋白基因 | 第23-24页 |
| ·植物Pht1家族磷酸盐转运蛋白的结构与表达特征 | 第24页 |
| 3 大豆遗传转化研究进展 | 第24-30页 |
| ·大豆遗传转化的受体系统 | 第25页 |
| ·大豆遗传转化方法 | 第25-26页 |
| ·影响大豆遗传转化的因素 | 第26-27页 |
| ·农杆菌介导大豆遗传转化的主要问题 | 第27-30页 |
| 第二章 野生茄子Na~+/H~+逆向转运蛋白基因(StNHX1)克隆与序列分析 | 第30-40页 |
| 1 材料与方法 | 第31-34页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·试验方法 | 第31-34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-39页 |
| ·叶片总RNA的提取 | 第34-35页 |
| ·StNHX1基因的克隆 | 第35-36页 |
| ·StNHX1基因序列分析 | 第36-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| 第三章 StNHX1与OsPT2植物表达载体构建 | 第40-50页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·试验材料 | 第41页 |
| ·试验方法 | 第41-44页 |
| 2 结果与分析 | 第44-48页 |
| ·pMD19-StNHXl及pMD19-OsPT2酶切检测 | 第44页 |
| ·植物表达载体PCR检测 | 第44-45页 |
| ·植物表达载体酶切检测 | 第45-47页 |
| ·含有植物表达载体的农杆菌工程菌鉴定 | 第47-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 转StNHX1基因菜用大豆的获得及耐盐性鉴定 | 第50-64页 |
| 1 材料与方法 | 第51-54页 |
| ·试验材料 | 第51-52页 |
| ·试验方法 | 第52-54页 |
| 2 结果与分析 | 第54-62页 |
| ·转基因植株的获得 | 第54页 |
| ·GUS组织化学染色检测 | 第54-56页 |
| ·除草剂抗性检测 | 第56页 |
| ·转基因植株分子检测 | 第56-58页 |
| ·转StNHX1基因植株后代的分离情况 | 第58页 |
| ·NaCl胁迫对T_3代转基因植株Na~+、K~+含量的影响 | 第58-59页 |
| ·NaCl胁迫对T_3代转基因植株叶绿素、丙二醛、脯氨酸及相对水含量的影响 | 第59-60页 |
| ·NaCl胁迫对T_3代转基因植株生长的影响 | 第60-62页 |
| 3 讨论 | 第62-64页 |
| 第五章 转OsPT2基因菜用大豆的获得及磷高效利用鉴定 | 第64-76页 |
| 1 材料与方法 | 第65-66页 |
| ·试验材料 | 第65页 |
| ·试验方法 | 第65-66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-74页 |
| ·转基因植株的获得 | 第66-67页 |
| ·GUS组织化学染色鉴定 | 第67-68页 |
| ·除草剂抗性检测 | 第68-69页 |
| ·转基因植株分子检测 | 第69-71页 |
| ·转OsPT2基因植株后代的分离情况 | 第71页 |
| ·低磷胁迫对T_2代转基因植株磷含量的影响 | 第71-72页 |
| ·低磷胁迫对T_2代转基因植株生长的影响 | 第72-74页 |
| 3 讨论 | 第74-76页 |
| 全文结论 | 第76-78页 |
| 创新之处 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-92页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文及申请专利 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
