| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 文章综述 | 第10-23页 |
| ·转基因水稻 | 第10-18页 |
| ·水稻遗传转化方法 | 第10-14页 |
| ·水稻遗传转化中所用的标记基因 | 第14-16页 |
| ·水稻基因工程面临的主要问题和对策 | 第16-18页 |
| ·基因工程在改良水稻方面的应用 | 第18-20页 |
| ·抗病基因工程 | 第18-19页 |
| ·抗虫基因工程 | 第19-20页 |
| ·抗除草剂基因工程 | 第20页 |
| ·抗逆基因工程 | 第20页 |
| ·改良品质 | 第20页 |
| ·hrp基因及其编码的研究进展 | 第20-22页 |
| ·hrp基因的发现及分布 | 第20-21页 |
| ·hrp基因功能 | 第21页 |
| ·harpin蛋白的应用 | 第21-22页 |
| ·研究的目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 含hrpZ_(psg12)基因的植物表达载体构建 | 第23-35页 |
| ·材料 | 第23-25页 |
| ·菌株及载体 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23-24页 |
| ·抗生素 | 第24页 |
| ·主要仪器设备 | 第24-25页 |
| ·材料 | 第25-31页 |
| ·bar选择标记植物表达载体的构建 | 第25-29页 |
| ·pmi选择标记植物表达载体的构建 | 第29-30页 |
| ·植物表达载体向根癌农杆菌EHA105转化 | 第30-31页 |
| ·试验结果 | 第31-35页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA1300-bar-hrpZ_(Psg12)的构建 | 第31-32页 |
| ·植物表达载体pCAMBIA1300-pmi-hrpZ_(Psg12)的构建 | 第32-33页 |
| ·植物表达载体向农杆菌EHA105转化 | 第33-35页 |
| 第三章 hrpZ_(Psg12)基因农杆菌介导法转化水稻的研究 | 第35-41页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·水稻品种 | 第35页 |
| ·菌株和质粒 | 第35页 |
| ·常用培养基 | 第35-36页 |
| ·主要试剂 | 第36页 |
| ·方法 | 第36-37页 |
| ·pCAMBIA1300-bar-hrpZ_(Psg12)向水稻中的转化 | 第36-37页 |
| ·pCAMBIA1300-pmi-hrpZ_(Psg12)向水稻中的转化 | 第37页 |
| ·水稻转化植株的获得 | 第37-41页 |
| ·pCAMBIA1300-bar-hrpZ_(Psg12)水稻转化植株的获得 | 第37-39页 |
| ·pCAMBIA1300-pmi-hrpZ_(Psg12)水稻转化植株的培育 | 第39-41页 |
| 第四章 转化植株的分子检测 | 第41-42页 |
| ·材料 | 第41页 |
| ·方法 | 第41页 |
| ·转化pCAMBIA1300-bar-hrpZ_(Psg12)水稻基因组DNA微量提取 | 第41页 |
| ·转化pCAMBIA1300-bar-hrpZ_(Psg12)水稻的PCR检测 | 第41页 |
| ·PCR检测试验结果 | 第41-42页 |
| 第五章 结论与讨论 | 第42-45页 |
| ·结论 | 第42页 |
| ·讨论 | 第42-44页 |
| ·水稻愈伤组织诱导率 | 第42页 |
| ·高效的水稻组培体系 | 第42页 |
| ·愈伤组织的褐化问题 | 第42-43页 |
| ·干燥16h对水稻愈伤组织分化的影响 | 第43页 |
| ·水稻基因组DNA快速提取方法 | 第43页 |
| ·关于转基因植物分子检测的方法 | 第43-44页 |
| ·本研究的后续工作 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 附录Ⅰ | 第52-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 作者简历 | 第56页 |
