| 摘要 | 第1-16页 |
| Abstract | 第16-20页 |
| 前言 | 第20-29页 |
| 1 特异性生物粘附给药系统概述 | 第20-25页 |
| 2 口服多肽药物研究的意义及问题 | 第25-26页 |
| 3 本论文研究的立题依据及目的 | 第26-28页 |
| 4 本论文研究的主要内容与方案设计 | 第28-29页 |
| 第一章 胸腺五肽纳米粒制剂处方设计前研究 | 第29-37页 |
| 1 材料与仪器 | 第29页 |
| 2 方法与结果 | 第29-35页 |
| ·TP5的基本性质 | 第29-30页 |
| ·TP5体外分析方法的建立 | 第30-32页 |
| ·紫外吸收光谱的测定 | 第30页 |
| ·色谱条件 | 第30-31页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第31页 |
| ·分析方法的确证 | 第31-32页 |
| ·TP5溶液稳定性考察 | 第32-35页 |
| ·温度的影响 | 第32-33页 |
| ·缓冲液种类与pH值的影响 | 第33-34页 |
| ·光照的影响 | 第34页 |
| ·超声的影响 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-36页 |
| 4 小结 | 第36-37页 |
| 第二章 胸腺五肽乳酸-羟基乙酸共聚物纳米粒的制备及性质 | 第37-56页 |
| 1 动物、材料与仪器 | 第37-38页 |
| 2 方法与结果 | 第38-53页 |
| ·TP5-NPs的制备 | 第38页 |
| ·冷冻干燥工艺考察 | 第38-39页 |
| ·添加剂种类的影响 | 第38页 |
| ·添加剂浓度的影响 | 第38-39页 |
| ·包封率的测定 | 第39-40页 |
| ·测定方法 | 第39页 |
| ·液相色谱系统的可行性验证 | 第39-40页 |
| ·方法回收率 | 第40页 |
| ·正交设计 | 第40-46页 |
| ·单因素试验 | 第40-44页 |
| ·正交设计 | 第44-45页 |
| ·最佳处方工艺验证 | 第45-46页 |
| ·TP5-NPs的基本性质 | 第46-48页 |
| ·形态观察 | 第46页 |
| ·粒径测定 | 第46页 |
| ·Zeta电位测定 | 第46-47页 |
| ·包封率与载药量的测定 | 第47-48页 |
| ·TP5-NPs体外稳定性考察 | 第48-49页 |
| ·TP5-NPs在溶液中的稳定性 | 第48-49页 |
| ·冻干TP5-NPs长期放置稳定性 | 第49页 |
| ·TP5-NPs体外释药特征考察 | 第49-53页 |
| ·TP5-NPs在人工胃肠液中的释药 | 第49-50页 |
| ·TP5-NPs在pH 7.4磷酸盐缓冲液中的释药 | 第50-51页 |
| ·TP5-NPs在大鼠血浆中的释药 | 第51-52页 |
| ·释药曲线的拟合 | 第52-53页 |
| 3 讨论 | 第53-55页 |
| 4 小结 | 第55-56页 |
| 第三章 胸腺五肽生物粘附纳米粒的制备及性质 | 第56-80页 |
| 1 动物、材料与仪器 | 第56-57页 |
| 2 方法与结果 | 第57-75页 |
| ·WGA的提取、纯化与鉴定 | 第57-65页 |
| ·WGA含量测定方法的建立 | 第57-59页 |
| ·WGA活性检测方法的建立 | 第59-61页 |
| ·WGA的提取 | 第61-63页 |
| ·WGA的纯化 | 第63-64页 |
| ·WGA的鉴定 | 第64-65页 |
| ·WGA-PLGA结合物的制备与性质 | 第65-68页 |
| ·WGA-PLGA的制备 | 第65页 |
| ·WGA-PLGA的分离与纯化 | 第65页 |
| ·WGA-PLGA的鉴定 | 第65-67页 |
| ·WGA-PLGA中WGA的含量测定 | 第67页 |
| ·WGA-PLGA的溶解性考察 | 第67页 |
| ·WGA-PLGA的活性测定 | 第67-68页 |
| ·生物粘附纳米粒的制备 | 第68页 |
| ·制备方法 | 第68页 |
| ·WGA表面密度的测定 | 第68页 |
| ·生物粘附纳米粒的基本性质 | 第68-70页 |
| ·形态观察 | 第68-69页 |
| ·粒径及Zeta电位测定 | 第69页 |
| ·包封率与载药量测定 | 第69页 |
| ·WGA-TP5-NPs表面WGA的活性测定 | 第69-70页 |
| ·WGA-TP5-NPs体外稳定性考察 | 第70-72页 |
| ·WGA-TP5-NPs在溶液中的稳定性 | 第70-72页 |
| ·WGA-TP5-NPs长期放置稳定性 | 第72页 |
| ·WGA-TP5-NPs体外释药特征考察 | 第72-75页 |
| ·WGA-TP5-NPs在人工胃肠液中的释药 | 第72页 |
| ·WGA-TP5-NPs在pH7.4磷酸盐缓冲液中的释药 | 第72-73页 |
| ·WGA-TP5-NPs在大鼠血浆中的释药 | 第73-74页 |
| ·释药曲线的拟合 | 第74-75页 |
| 3 讨论 | 第75-79页 |
| 4 小结 | 第79-80页 |
| 第四章 胸腺五肽生物粘附纳米粒粘附性的体外评价 | 第80-104页 |
| 1 动物、材料与仪器 | 第80-81页 |
| 2 方法与结果 | 第81-100页 |
| ·粘蛋白结合实验 | 第81-87页 |
| ·PM含量测定方法的建立 | 第81-83页 |
| ·粘蛋白结合实验方法 | 第83页 |
| ·影响因素考察 | 第83-86页 |
| ·粘蛋白结合动力学研究 | 第86-87页 |
| ·单糖抑制试验 | 第87页 |
| ·荧光标记纳米粒的制备与性质 | 第87-93页 |
| ·FITC含量测定方法的建立 | 第87-89页 |
| ·FITC标记PLGA的合成 | 第89-90页 |
| ·荧光标记纳米粒的制备 | 第90页 |
| ·荧光标记纳米粒的性质 | 第90-92页 |
| ·荧光标记纳米粒的稳定性考察 | 第92-93页 |
| ·肠囊孵化实验 | 第93-100页 |
| ·小肠样品荧光分析方法的建立 | 第93-97页 |
| ·肠囊孵化实验方法 | 第97页 |
| ·肠段样本的测定 | 第97页 |
| ·肠囊孵化实验结果 | 第97-98页 |
| ·单糖抑制试验 | 第98-99页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第99-100页 |
| 3 讨论 | 第100-103页 |
| 4 小结 | 第103-104页 |
| 第五章 胸腺五肽生物粘附纳米粒的体内粘附及组织分布 | 第104-124页 |
| 1 动物、材料与仪器 | 第104页 |
| 2 方法与结果 | 第104-121页 |
| ·生物样品荧光分析方法的建立 | 第104-114页 |
| ·生物样品的处理 | 第104页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第104-106页 |
| ·分析方法的确证 | 第106-114页 |
| ·体内粘附实验 | 第114-116页 |
| ·给药方法及生物样本的采集 | 第114-115页 |
| ·组织样本的测定 | 第115页 |
| ·体内粘附实验结果 | 第115-116页 |
| ·体内组织分布考察 | 第116-121页 |
| ·给药方法及组织样本的采集 | 第116-117页 |
| ·组织样本的测定 | 第117页 |
| ·单次给药体内组织分布情况 | 第117-118页 |
| ·多次给药体内组织分布情况 | 第118-121页 |
| 3 讨论 | 第121-123页 |
| 4 小结 | 第123-124页 |
| 第六章 口服胸腺五肽生物粘附纳米粒的药效学研究 | 第124-134页 |
| 1 动物、材料与仪器 | 第124-125页 |
| 2 方法与结果 | 第125-130页 |
| ·实验方法 | 第125-126页 |
| ·大鼠免疫失调模型的建立 | 第125页 |
| ·实验安排及给药方式 | 第125页 |
| ·抗凝血样本的检测 | 第125-126页 |
| ·实验结果 | 第126-130页 |
| 3 讨论 | 第130-133页 |
| 4 小结 | 第133-134页 |
| 全文结论 | 第134-136页 |
| 创新点与展望 | 第136-138页 |
| 参考文献 | 第138-147页 |
| 缩略词表 | 第147-149页 |
| 致谢 | 第149-150页 |
| 攻读博士学位期间发表论文情况 | 第150页 |
