中英文缩略语对照表 | 第1-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-33页 |
1 环境内分泌物质研究现状 | 第13-22页 |
·EDCs的来源、种类和特点 | 第13-14页 |
·EDCs的危害 | 第14-15页 |
·EDCs的检测 | 第15-21页 |
·EDCs的迁移转化与降解 | 第21-22页 |
·EDCs生物标志物 | 第22页 |
2 鱼类性别决定与分化研究现状 | 第22-23页 |
3 减数分裂起始研究现状 | 第23-27页 |
·视黄酸(RA,Retinoic acid)信号通路在减数分裂起始中的作用 | 第23-25页 |
·RA信号通路对于减数分裂的调控研究 | 第25-27页 |
4 雌、雄减数分裂起始时间对性别决定和分化的影响 | 第27-28页 |
5 EDCs对鱼类性别决定和分化的影响 | 第28-30页 |
6 EDCs对硬骨鱼类减数分裂起始的影响 | 第30页 |
7 科学问题的提出和本研究的目的意义 | 第30-33页 |
第二章 水蚯蚓投喂时间对南方鲇性别的影响 | 第33-39页 |
1 引言 | 第33页 |
2 材料与方法 | 第33-35页 |
·实验动物 | 第33页 |
·主要仪器 | 第33-34页 |
·性腺材料收集与处理方法 | 第34-35页 |
3 实验结果 | 第35-36页 |
·实验鱼性比统计结果 | 第35页 |
·实验鱼性腺组织学观察结果 | 第35-36页 |
4 讨论 | 第36-38页 |
附表 | 第38-39页 |
第三章 水蚯蚓体内EDCs的检测、纯化以及EDCs对南方鲇性别的影响 | 第39-53页 |
1 引言 | 第39-42页 |
2 材料与方法 | 第42-44页 |
·材料、试剂和仪器 | 第42页 |
·水蚯蚓样品制备 | 第42页 |
·EDCs检测方法的建立 | 第42-43页 |
·EDCs的半制备与检测 | 第43页 |
·纯化EDCs cocktail对南方鲇性别的影响 | 第43-44页 |
3 结果 | 第44-51页 |
·水蚯蚓体内EDCs提取方法的选择 | 第44页 |
·标准曲线、精密度、检出限和定量限 | 第44-47页 |
·水蚯蚓体内EDCs的含量 | 第47-48页 |
·人工饵料中EDCs的检测 | 第48-49页 |
·半制备色谱条件的建立 | 第49-50页 |
·纯化EDCs验证 | 第50页 |
·南方鲇性比统计结果 | 第50-51页 |
4 讨论 | 第51-53页 |
第四章 EDCs对基因表达和血清中雌、雄激素和卵黄蛋白原水平的影响 | 第53-67页 |
1 引言 | 第53-55页 |
2 材料和方法 | 第55-60页 |
·实验材料 | 第55页 |
·试剂和载体 | 第55页 |
·实验方法 | 第55-60页 |
3 结果 | 第60-64页 |
·Sf1、Foxl2、Wt1和Dmrt1在一龄南方鲇性腺中的表达水平 | 第60页 |
·EDCs影响Sf1、Foxl2、Dmrt1和Cyp19a1a的表达 | 第60-61页 |
·EDCs影响血清中雌、雄激素的水平 | 第61-62页 |
·EDCs可以诱导VTG的表达 | 第62页 |
·EDCs可以诱导VTG的表达 | 第62-64页 |
4 讨论 | 第64-67页 |
第五章 EDCs对南方鲇减数分裂的影响 | 第67-87页 |
1 引言 | 第67-68页 |
2 材料与方法 | 第68-80页 |
·实验动物 | 第68页 |
·试剂与仪器 | 第68-69页 |
·相关试剂配制 | 第69-72页 |
·方法 | 第72-80页 |
3 结果 | 第80-84页 |
·减数分裂前后南方鲇性腺的组织学观察 | 第80页 |
·南方鲇性腺Stra8表达图谱 | 第80-81页 |
·Stra8重组蛋白原核表达及抗体制备 | 第81-82页 |
·Stra8/Stra8在南方鲇性腺中的细胞表达模式 | 第82-83页 |
·RA诱导Stra8/Stra8的表达 | 第83-84页 |
·EDCs影响Stra8的表达南方鲇减数分裂的起始 | 第84页 |
4 讨论 | 第84-87页 |
结论 | 第87-89页 |
本研究的主要创新点 | 第89-91页 |
参考文献 | 第91-107页 |
致谢 | 第107-109页 |
在读期间发表论文 | 第109页 |
在读期间参加科研情况 | 第109页 |