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猪链球菌2型cps2E基因缺失株构建及生物学特性研究

摘要第1-8页
Abstract第8-10页
缩略词表第10-11页
1 前言第11-20页
   ·猪链球菌病第11-12页
   ·猪链球菌病研究进展第12-15页
     ·猪链球菌致病机制研究进展第12-13页
     ·猪链球菌毒力因子研究进展第13-15页
   ·猪链球菌2型荚膜多糖(CPS)研究进展第15-18页
     ·荚膜多糖的结构第15-16页
     ·荚膜多糖的生物合成第16-18页
     ·荚膜多糖对细菌毒力的调控第18页
   ·基因cps2E的研究进展第18-20页
2 研究目的与意义第20-21页
3 材料与方法第21-38页
   ·材料第21-26页
     ·菌株、质粒和培养条件第21-23页
     ·动物和细胞第23页
     ·主要药品、试剂、试剂盒与仪器第23页
     ·主要培养基及抗生素配制第23-24页
     ·主要溶液配制第24-25页
     ·引物第25-26页
   ·方法第26-38页
     ·大肠杆菌感受态细胞的制备(氯化钙法)第26页
     ·猪链球菌2型的复苏增殖及基因组DNA的提取第26-27页
     ·PCR扩增第27-28页
     ·DNA纯化与回收第28-29页
     ·DNA与载体的连接反应第29页
     ·连接产物的转化第29页
     ·质粒的小量制备(碱裂解法)第29-30页
     ·重组质粒的鉴定第30-31页
     ·猪链球菌2型感受态细胞的制备第31页
     ·猪链球菌2型的电转化第31页
     ·突变株的筛选和鉴定第31-33页
     ·基因缺失突变株生长特性的研究第33页
     ·细菌荚膜的培养第33页
     ·革兰氏染色及镜检第33-34页
     ·细菌透射电子显微镜观察第34页
     ·细菌荚膜粗多糖的提取第34页
     ·荚膜粗多糖糖含量测定(硫酸-苯酚法)第34-35页
     ·细胞感染试验第35页
     ·细胞吞噬试验第35-36页
     ·小鼠半数致死量试验第36-37页
     ·小鼠存活率试验第37页
     ·小鼠血中载菌量测定第37-38页
4 结果与分析第38-48页
   ·cps2E基因生物信息学相关分析第38-39页
   ·cps2E基因缺失突变株的构建与鉴定第39-41页
     ·pSET4s-△cps2E重组质粒的构建与鉴定第39-40页
     ·cps2E基因缺失突变株的筛选与鉴定第40-41页
   ·突变株△cps2E的生物学性状分析第41-43页
     ·生长特性分析第41-42页
     ·革兰氏染色观察第42页
     ·透射电镜观察第42-43页
     ·荚膜粗多糖的糖含量测定第43页
   ·突变株△cps2E的生物学功能分析第43-48页
     ·细胞粘附与侵入试验第43-44页
     ·细胞吞噬试验第44-45页
     ·突变株对BALB/c小鼠半数致死量(LD_(50))的测定第45-46页
     ·BALB/c小鼠存活率试验第46页
     ·BALB/c小鼠血中载菌量的动态变化第46-48页
5 讨论第48-52页
   ·cps2E基因的选定第48页
   ·基因缺失突变株构建的策略第48-49页
   ·cps2E基因对S.suis 2生物学性状的影响第49页
   ·cps2E基因对S.suis 2毒力的影响第49-50页
   ·后续工作展望第50-52页
6 结论第52-53页
参考文献第53-62页
致谢第62页

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