| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1 绪论 | 第11-25页 |
| ·原核生物 16S rRNA 基因多重拷贝及其序列异化 | 第11-15页 |
| ·原核生物基因组内的 CN-rrs 是原核生物种的基本特征之一 | 第11-12页 |
| ·原核生物 CN-rrs 与其利用环境资源的生态策略有关 | 第12-13页 |
| ·原核生物基因组内 rrs 拷贝间的异化 | 第13页 |
| ·原核生物基因组内 rrs 拷贝间异化与其对环境的适应有关 | 第13-14页 |
| ·小结与展望 | 第14-15页 |
| ·弧菌概述 | 第15-18页 |
| ·弧菌的分类地位 | 第15页 |
| ·弧菌的生态学意义 | 第15-16页 |
| ·弧菌 16S rRNA 基因拷贝数及序列异化研究进展 | 第16-18页 |
| ·rrs 拷贝数与异质性检测方法 | 第18-25页 |
| 2 弧菌菌株的鉴定 | 第25-35页 |
| ·前言 | 第25页 |
| ·材料和方法 | 第25-27页 |
| ·菌株和引物 | 第25页 |
| ·培养基 | 第25-26页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第26页 |
| ·菌株的多基因鉴定 | 第26-27页 |
| ·结果 | 第27-32页 |
| ·讨论 | 第32-33页 |
| ·本章小结 | 第33-35页 |
| 3 弧菌基因组内 16S rRNA 基因拷贝数的研究 | 第35-54页 |
| ·前言 | 第35页 |
| ·材料与方法 | 第35-41页 |
| ·菌株和引物 | 第35-36页 |
| ·培养基 | 第36页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第36页 |
| ·弧菌基因组 DNA 提取 | 第36-37页 |
| ·定量引物设计及扩增效果验证 | 第37页 |
| ·标准质粒构建 | 第37-40页 |
| ·标准曲线绘制 | 第40页 |
| ·弧菌菌株 16S rDNA 拷贝数的确定 | 第40-41页 |
| ·结果 | 第41-50页 |
| ·引物的设计及扩增效果 | 第41-42页 |
| ·标准质粒的构建 | 第42-44页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第44-47页 |
| ·弧菌 16S rRNA 基因拷贝数 | 第47-50页 |
| ·讨论 | 第50-53页 |
| ·荧光定量 PCR 确定 16S rRNA 基因拷贝数 | 第50-51页 |
| ·16S rRNA 基因拷贝数的波动 | 第51-53页 |
| ·本章小结 | 第53-54页 |
| 4 V. alginolyticus ATCC 17749~T的16S-ITS rDNA 研究 | 第54-74页 |
| ·前言 | 第54页 |
| ·材料与方法 | 第54-58页 |
| ·菌株及引物 | 第54页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第54-55页 |
| ·培养基 | 第55页 |
| ·16S-ITS rDNA 克隆文库的构建 | 第55-56页 |
| ·克隆文库阳性克隆检测 | 第56-57页 |
| ·初步测序及序列分析 | 第57页 |
| ·16S-ITS 的酶切筛选及测通 | 第57-58页 |
| ·序列分析 | 第58页 |
| ·结果 | 第58-71页 |
| ·ITS 长度及种类 | 第58页 |
| ·16S-ITS rDNA 序列酶切分析 | 第58-65页 |
| ·序列分析 | 第65-71页 |
| ·讨论 | 第71-73页 |
| ·菌株 ATCC 17749~T的16S rRNA 基因拷贝数 | 第71页 |
| ·菌株 ATCC 17749~T的16S rRNA 基因异质性 | 第71-72页 |
| ·菌株 ATCC 17749~T的ITS 序列特点 | 第72-73页 |
| ·本章小结 | 第73-74页 |
| 5 结论与创新点 | 第74-76页 |
| ·结论 | 第74-75页 |
| ·弧菌菌株的鉴定 | 第74页 |
| ·弧菌基因组内 16S rRNA 基因的拷贝数 | 第74页 |
| ·V. alginolyticus ATCC 17749~T的16S-ITS rDNA 序列 | 第74-75页 |
| ·创新点 | 第75-76页 |
| ·研究方法 | 第75页 |
| ·研究内容 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-81页 |
| 附录A pMD19-T simple vector 图谱 | 第81-82页 |
| 在学研究成果 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
