| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 目录 | 第11-16页 |
| 本文主要缩略语表 | 第16-19页 |
| 第一章 引言 | 第19-29页 |
| 第一节 研究背景 | 第19-26页 |
| ·H_2S 在神经系统的功能研究进展 | 第20-25页 |
| ·气体信号分子 | 第20-22页 |
| ·内源性 H_2S 的生成、代谢及其调节 | 第22-24页 |
| ·H_2S 在神经系统的生理及病理生理作用 | 第24-25页 |
| ·脑缺血/缺氧对海马功能的影响 | 第25页 |
| ·H_2S 与脑缺血/缺氧 | 第25-26页 |
| 第二节 研究目的、意义和内容 | 第26-28页 |
| ·研究目的 | 第26-27页 |
| ·研究意义 | 第27页 |
| ·主要内容与方法 | 第27-28页 |
| 第三节 本论文的结构安排 | 第28-29页 |
| 第二章 H_2S 对慢性脑缺血大鼠空间认知功能的影响 | 第29-55页 |
| 第一节 前言 | 第29-35页 |
| ·海马与学习记忆功能 | 第29-31页 |
| ·脑缺血对海马功能的影响 | 第31-33页 |
| ·H_2S 改善脑缺血后功能 | 第33-35页 |
| 第二节 材料与方法 | 第35-43页 |
| ·实验材料 | 第35-38页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·主要实验试剂 | 第35-36页 |
| ·主要试剂配方 | 第36-37页 |
| ·主要实验仪器 | 第37页 |
| ·计算机软件 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-43页 |
| ·动物分组及处理 | 第38页 |
| ·大鼠慢性脑缺血模型（2VO）制备 | 第38-39页 |
| ·MWM 测试及数据处理 | 第39-41页 |
| ·大鼠灌流取脑 | 第41页 |
| ·大鼠脑冰冻切片制备 | 第41-42页 |
| ·脑片 HE 染色及结果判断 | 第42页 |
| ·海马 H_2S 含量测定 | 第42-43页 |
| ·数据处理及统计分析 | 第43页 |
| 第三节 结果 | 第43-49页 |
| ·实验大鼠情况 | 第43页 |
| ·H_2S 对慢性脑缺血大鼠的空间认知障碍的影响 | 第43-49页 |
| ·MWM 定位巡航训练结果 | 第44-46页 |
| ·MWM 空间探索测试结果 | 第46-48页 |
| ·大鼠海马 CA1 区细胞形态学改变 | 第48页 |
| ·大鼠海马内 H_2S 含量变化 | 第48-49页 |
| 第四节 讨论 | 第49-54页 |
| ·实验中的动物分组及给药依据 | 第49-50页 |
| ·外源性 H_2S 对慢性脑缺血大鼠空间认知的影响 | 第50-52页 |
| ·慢性脑缺血对大鼠海马内 H_2S 含量的影响及其机制 | 第52-53页 |
| ·外源性 H_2S 的神经保护作用与其应用浓度有关 | 第53-54页 |
| 第五节 小结 | 第54-55页 |
| 第三章 H_2S 对慢性脑缺血大鼠海马电生理功能的影响 | 第55-82页 |
| 第一节 前言 | 第55-63页 |
| ·海马的结构及功能 | 第55-56页 |
| ·海马锥体细胞的突触可塑性 | 第56-58页 |
| ·海马的神经振荡 | 第58-61页 |
| ·神经振荡与学习记忆功能 | 第61页 |
| ·脑缺血对海马神经元活动的影响 | 第61-62页 |
| ·H_2S 与神经振荡 | 第62-63页 |
| 第二节 材料与方法 | 第63-70页 |
| ·实验材料 | 第63-66页 |
| ·实验动物 | 第63页 |
| ·主要实验试剂 | 第63-64页 |
| ·主要试剂配方 | 第64-65页 |
| ·主要实验仪器 | 第65页 |
| ·计算机软件 | 第65-66页 |
| ·实验方法 | 第66-70页 |
| ·动物分组及处理 | 第66页 |
| ·大鼠慢性脑缺血模型（2VO）制备 | 第66页 |
| ·海马 CA3-CA1 电生理记录 | 第66-68页 |
| ·大鼠灌流取脑 | 第68页 |
| ·大鼠脑冰冻切片制备 | 第68页 |
| ·免疫组化染色及结果判断 | 第68-69页 |
| ·海马内电极定位观察 | 第69页 |
| ·LTP 数据分析 | 第69-70页 |
| ·LFPs 数据分析指标及参数 | 第70页 |
| ·PLV 计算 | 第70页 |
| ·NIF 计算 | 第70页 |
| ·数据处理及统计分析 | 第70页 |
| 第三节 结果 | 第70-76页 |
| ·H_2S 对慢性脑缺血大鼠海马 CA1 区神经元突触可塑性的影响 | 第70-74页 |
| ·电极定位 | 第70-71页 |
| ·海马 CA1 区神经元突触可塑性的变化 | 第71-74页 |
| ·海马 CA1 区生长相关蛋白（GAP-43）的表达 | 第74-75页 |
| ·PLV 结果 | 第75页 |
| ·NIF 结果 | 第75-76页 |
| 第四节 讨论 | 第76-80页 |
| ·H_2S 对慢性脑缺血大鼠海马 CA1 区神经元突触可塑性的影响 | 第76-78页 |
| ·H_2S 影响脑缺血后的神经振荡 | 第78-80页 |
| 第五节 小结 | 第80-82页 |
| 第四章 H_2S 促进大鼠恶性胶质瘤的血管新生 | 第82-102页 |
| 第一节 前言 | 第82-85页 |
| ·血管新生与肿瘤 | 第82-83页 |
| ·神经胶质瘤及其动物模型 | 第83页 |
| ·H_2S 与血管新生 | 第83-85页 |
| 第二节 材料与方法 | 第85-90页 |
| ·实验材料 | 第85-87页 |
| ·实验动物 | 第85页 |
| ·实验用细胞系 | 第85页 |
| ·主要实验试剂 | 第85-86页 |
| ·主要实验液体配方 | 第86页 |
| ·主要实验仪器 | 第86-87页 |
| ·计算机软件 | 第87页 |
| ·实验方法 | 第87-90页 |
| ·细胞培养 | 第87页 |
| ·动物分组及处理 | 第87-88页 |
| ·C6 胶质瘤大鼠模型制备 | 第88页 |
| ·大鼠灌流取脑 | 第88页 |
| ·大鼠脑冰冻切片制备 | 第88页 |
| ·脑片 HE 染色及结果判断 | 第88页 |
| ·肿瘤体积的测定 | 第88-89页 |
| ·免疫组化染色及结果判断 | 第89页 |
| ·肿瘤微血管密度的测定 | 第89页 |
| ·脑组织 H_2S 含量测定 | 第89-90页 |
| ·数据处理及统计分析 | 第90页 |
| 第三节 结果 | 第90-97页 |
| ·荷瘤鼠一般表现 | 第90页 |
| ·大鼠脑内 H_2S 的含量 | 第90-91页 |
| ·H_2S 标准曲线 | 第90页 |
| ·脑内 H_2S 含量 | 第90-91页 |
| ·HE 染色结果 | 第91-92页 |
| ·脑内胶质瘤体积测定 | 第92-93页 |
| ·免疫组化阴性对照结果 | 第93-94页 |
| ·CD34 表达及瘤内微血管密度测定 | 第94-95页 |
| ·CD34 的表达 | 第94-95页 |
| ·MVD 测定结果 | 第95页 |
| ·HIF-1α的表达 | 第95-96页 |
| ·MMP-2 的表达 | 第96-97页 |
| 第四节 讨论 | 第97-101页 |
| ·选择 GBM 作为研究对象的原因以及 NaHS 的给药依据 | 第97-98页 |
| ·外源性 H_2S 促进脑内 GBM 的生长 | 第98页 |
| ·脑内 H_2S 含量与 GBM 的发育侵袭有关 | 第98-100页 |
| ·H_2S 促进 GBM 的血管新生 | 第100页 |
| ·H_2S 促进 GBM 内 HIF-1α的表达 | 第100页 |
| ·H_2S 促进 GBM 内 MMP-2 的表达 | 第100-101页 |
| 第五节 小结 | 第101-102页 |
| 第五章 结论与展望 | 第102-105页 |
| 第一节 主要结论 | 第102-103页 |
| 第二节 主要创新点 | 第103-104页 |
| 第三节 研究前景展望 | 第104-105页 |
| 参考文献 | 第105-122页 |
| 致谢 | 第122-123页 |
| 附录 | 第123-154页 |
| 气体信号分子 H_2S 的神经保护作用研究进展 | 第123-139页 |
| 参考文献 | 第135-139页 |
| 海马结构γ振荡的研究进展 | 第139-154页 |
| 参考文献 | 第149-154页 |
| 个人简历 | 第154-155页 |
| 在学期间发表论文 | 第155-156页 |
