| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略语表 | 第10-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-22页 |
| ·引言 | 第14页 |
| ·植物磷吸收与磷信号调控 | 第14-17页 |
| ·植物中PHO1基因的研究 | 第17-19页 |
| ·植物中PHO2基因的研究 | 第19-21页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 突变体的筛选及表型分析 | 第22-39页 |
| ·材料与方法 | 第22-28页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-28页 |
| ·突变体筛选 | 第22页 |
| ·水稻叶片DNA快速提取 | 第22-23页 |
| ·水稻PHO2基因T-DNA插入鉴定 | 第23页 |
| ·水稻营养液配方 | 第23-24页 |
| ·温室中水稻的生长条件 | 第24页 |
| ·突变体表型的观察及背景的验证 | 第24-25页 |
| ·突变体pho2-sup1的磷含量测定 | 第25-27页 |
| ·突变体pho2-sup1的总磷含量测定 | 第27-28页 |
| ·结果与分析 | 第28-38页 |
| ·突变体筛选的结果分析 | 第28-29页 |
| ·突变体表型分析 | 第29-38页 |
| ·不同培养条件下的突变体表型 | 第29-32页 |
| ·pho2-sup1叶片有效磷含量测定结果 | 第32-33页 |
| ·突变体pho2-sup1的总磷、总氮含量测定分析 | 第33-35页 |
| ·pho2-sup1磷信号相关基因的表达分析 | 第35-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 突变体pho2-sup1的基因克隆 | 第39-52页 |
| ·材料与方法 | 第39-48页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·方法 | 第39-48页 |
| ·F_2群体的构建 | 第39-40页 |
| ·突变体的遗传分析 | 第40页 |
| ·F_2群体样品DNA的处理 | 第40页 |
| ·水稻基因组DNA的微量提取法(TPS法) | 第40页 |
| ·多态标记的选择 | 第40-41页 |
| ·图位克隆PCR反应体系 | 第41页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第41-42页 |
| ·候选基因的确定 | 第42-43页 |
| ·dCAPS验证点突变 | 第43页 |
| ·植物cDNA的制备 | 第43-44页 |
| ·转基因回复载体的构建 | 第44-46页 |
| ·连接产物热激转化DH5α | 第46页 |
| ·水稻转基因方法 | 第46-48页 |
| ·水稻成熟胚诱导愈伤 | 第46-47页 |
| ·农杆菌的培养 | 第47页 |
| ·共培养及抗性愈伤的筛选 | 第47页 |
| ·抗性愈伤的分化及成苗 | 第47-48页 |
| ·炼苗、移栽 | 第48页 |
| ·转基因苗有效磷含量的分析 | 第48页 |
| ·结果与分析 | 第48-51页 |
| ·F_2群体的构建及遗传分析 | 第48页 |
| ·突变基因的图位克隆 | 第48-49页 |
| ·候选基因的确定 | 第49-50页 |
| ·突变体回复验证 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 PHO1内源反义转录本的分析 | 第52-57页 |
| ·材料 | 第52页 |
| ·方法 | 第52-54页 |
| ·NATS-OV载体的构建 | 第52-54页 |
| ·NATS-OV转基因苗实时定量PCR分析 | 第54页 |
| ·NATS-OV载体的转基因 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-56页 |
| ·本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 结论与展望 | 第57-59页 |
| ·结论 | 第57-58页 |
| ·展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |