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红景天中苷(苷元)类成分的抗辐射活性及其在Caco-2模型中的转运机制研究

英文缩略词表第1-10页
中文摘要第10-13页
Abstract第13-16页
前言第16-30页
 1 红景天属植物简介第16-20页
   ·红景天属植物的化学成分第16页
   ·红景天属植物药理活性及作用机制第16-20页
     ·“适应原”与减压作用第17-18页
     ·抗缺氧第18页
     ·抗疲劳第18页
     ·抗病毒及抗肿瘤第18-19页
     ·改善骨新陈代谢第19页
     ·免疫增强作用第19页
     ·心血管及神经保护作用第19-20页
     ·抗辐射作用第20页
     ·其他作用第20页
 2 红景天在与课题相关领域的国内外研究现状第20-23页
   ·抗氧化作用研究现状第20-22页
     ·抗氧化作用机制第21页
     ·天然产物抗氧化作用的途径第21-22页
     ·红景天抗氧化作用研究现状第22页
   ·基于 Caco-2 体外模型的渗透转运研究现状第22-23页
 3 立题依据及本研究的意义第23-25页
 4 参考文献第25-30页
第一部分 红景天中八种苷(苷元)体外抗氧化作用的研究第30-105页
 第一节 受试物对 DPPH 自由基清除作用第30-39页
  1 实验材料第30-31页
   ·实验仪器第30页
   ·实验试剂第30页
   ·溶液配制第30-31页
  2 实验方法第31-32页
  3 实验结果第32-38页
  4 讨论第38-39页
 第二节 受试物对超氧阴离子清除作用第39-51页
  1 实验材料第39-40页
   ·实验仪器第39页
   ·实验试剂第39页
   ·溶液配制第39-40页
  2 实验方法第40-41页
  3 实验结果第41-50页
  4 讨论第50-51页
 第三节 受试物对羟自由基清除作用第51-65页
  1 实验材料第51-52页
   ·实验仪器第51页
   ·实验试剂第51页
   ·溶液配制第51-52页
  2 实验方法第52-54页
   ·乙醇对羟自由基的清除作用考察第52-53页
   ·实验条件的优化第53-54页
  3 实验结果第54-64页
   ·模型条件评价第54-55页
   ·DMSO 的羟自由基清除活性第55-56页
   ·抗氧剂和萃取步骤对实验结果的影响第56-57页
   ·受试物浓度选择第57-59页
   ·受试物对羟自由基清除作用的考察第59-64页
  4 讨论第64-65页
 第四节 受试物对 NO 自由基抑制作用第65-73页
  1 实验材料第65-66页
   ·实验仪器第65页
   ·实验试剂第65页
   ·溶液配制第65-66页
  2 实验方法第66-67页
   ·实验模型的建立及条件优化第66-67页
   ·Griess 反应评价受试物对 NO 自由基的抑制作用第67页
  3 实验结果第67-72页
   ·SNP 的最佳剂量确定第67-68页
   ·红景天中八种苷(苷元)对 NO 抑制作用的比较第68-72页
  4 讨论第72-73页
 第五节 受试物总抗氧化能力的考察第73-83页
  1 实验材料第73-74页
   ·实验仪器第73页
   ·实验试剂第73页
   ·溶液配制第73-74页
  2 实验方法第74-75页
   ·建立 FeSO_4标准曲线第74页
   ·TPTZ 法评价总抗氧化能力第74-75页
  3 实验结果第75-82页
   ·FeSO_4标准曲线第75-76页
   ·红景天中八种苷(苷元)的总抗氧化能力比较第76-82页
  4 讨论第82-83页
 第六节 受试物抗脂质过氧化能力的考察第83-101页
  1 实验材料第83-85页
   ·实验仪器第83页
   ·实验试剂第83页
   ·实验动物第83页
   ·溶液配制第83-85页
  2 实验方法第85-87页
   ·脂质过氧化模型的建立第85-87页
     ·制备小鼠肝匀浆第85页
     ·建立 MDA(丙二醛)标准曲线第85页
     ·模型的验证第85-86页
     ·实验条件的优化第86-87页
   ·脂质过氧化模型的建立第87页
  3 实验结果第87-100页
   ·MDA(丙二醛)标准曲线第87-88页
   ·FeSO_4和 BHT 对实验结果的影响第88-89页
   ·不同肝匀浆浓度对实验结果的影响第89-91页
   ·红景天中八种苷(苷元)的抗脂质过氧化能力比较第91-100页
  4 讨论第100-101页
 小结第101-102页
 参考文献第102-105页
第二部分 红景天中八种苷(苷元)抗辐射作用的体外研究第105-132页
 1 实验材料第105-107页
   ·实验仪器第105页
   ·实验试剂第105页
   ·细胞株与培养条件第105-106页
   ·辐射源第106页
   ·溶液配制第106-107页
 2 实验方法第107-109页
   ·辐射损伤模型的构建第107-108页
     ·细胞增殖检测方法的考察第107页
     ·细胞种类的选择第107页
     ·细胞密度及检测时间的考察第107页
     ·辐照剂量的选择第107-108页
   ·MTS 法考察受试物对 AHH-1 细胞的毒性作用第108页
   ·~(60)Co-γ辐照后测定受试物对 AHH-1 细胞的保护作用第108页
   ·统计学分析第108-109页
 3 实验结果第109-130页
   ·MTS 法与 MTT 法的比较第109-110页
   ·AHH-1 细胞与 HUVEC 细胞对γ射线敏感性的对比结果第110-111页
   ·最佳 AHH-1 细胞密度第111-112页
   ·最佳辐照剂量第112-113页
   ·红景天中八种苷(苷元)对 AHH-1 细胞的毒性作用第113-122页
   ·目标受试物对辐照后 AHH-1 细胞的保护作用第122-130页
 4 讨论第130-131页
 参考文献第131-132页
第三部分 目标抗辐射活性成分在 Caco-2 模型上的渗透及转运机制研究第132-155页
 第一节 Caco-2 渗透模型的构建与评估第132-143页
  1 实验材料第132-134页
   ·实验仪器第132-133页
   ·实验试剂第133页
   ·细胞株第133页
   ·溶液配制第133-134页
  2 实验方法第134-137页
   ·Caco-2 单层细胞渗透转运模型的建立第134-135页
     ·Transwell 培养板的胶原包被第134页
     ·Caco-2 细胞的培养第134页
     ·Caco-2 细胞的接种第134-135页
   ·不同转运介质及不同作用时间的考察第135页
   ·Caco-2 单层细胞渗透转运模型的评价第135-136页
     ·细胞单层的完整性和紧密性评价第135-136页
     ·细胞单层的通透性验证第136页
   ·表观通透系数计算第136-137页
  3 实验结果第137-143页
   ·Caco-2 单层模型的形态学确证第137-138页
   ·转运介质及作用时间对 TEER 的影响第138-139页
   ·细胞单层的完整性和紧密性验证第139-140页
   ·细胞单层的通透性验证第140-143页
 第二节 目标抗辐射活性成分对细胞单层毒性的考察及供侧浓度的确立第143-148页
  1 实验材料第143页
   ·实验仪器第143页
   ·实验材料第143页
  2 实验方法第143-144页
  3 实验结果第144-148页
 第三节 目标抗辐射活性成分的双向转运研究第148-153页
  1 实验材料第148页
   ·实验仪器第148页
   ·实验材料第148页
  2 实验方法第148-149页
   ·具体实验步骤第148页
   ·数据分析与处理第148-149页
  3 实验结果第149-153页
   ·目标抗辐射活性成分在 Caco-2 单层模型中的双向转运第149-150页
   ·药物浓度对转运的影响第150-152页
     ·AP→BL 方向第150-151页
     ·BL→AP 方向第151-152页
   ·时间对转运的影响第152-153页
 讨论第153-154页
 参考文献第154-155页
结语第155-157页
综述第157-177页
 摘要第157-158页
 1 Caco-2 单层细胞模型第158-159页
   ·模型的优点与局限性第158页
   ·模型表达的载体第158-159页
 2 渗透和转运的研究第159-167页
   ·药物的通透性评价第160-161页
   ·摄取研究第161-162页
   ·外排研究第162-164页
   ·基因敲除模型第164-165页
   ·协同作用研究第165-166页
   ·药物相互作用研究第166-167页
   ·其它应用(计算机辅助模型)第167页
 3 小结与展望第167-169页
 参考文献第169-177页
个人简历第177页
在读期间发表论文第177-178页
致谢第178-179页
附件第179-183页

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