| 摘要 | 第1-9页 |
| 英文缩写表 | 第9-11页 |
| 中文摘要 | 第11-13页 |
| 英文摘要 | 第13-16页 |
| 1. 前言 | 第16-19页 |
| 2. 材料和方法 | 第19-37页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·主要用液配制 | 第20-21页 |
| ·毛囊神经干细胞的培养与鉴定 | 第21-24页 |
| ·毛囊神经干细胞转染 | 第24-26页 |
| ·动物模型的制备 | 第26-28页 |
| ·取材及石蜡切片 | 第28页 |
| ·HE 染色 | 第28页 |
| ·免疫组织化学ABC 法 | 第28-29页 |
| ·计算机图像处理及统计学分析 | 第29页 |
| ·Agilent 基因表达谱芯片及数据分析 | 第29-34页 |
| ·Affymetrix 基因表达谱芯片及数据分析 | 第34-35页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第35-37页 |
| 3. 结果 | 第37-66页 |
| ·毛囊神经干细胞的培养与鉴定 | 第37-40页 |
| ·毛囊神经干细胞转染EGFP | 第40-42页 |
| ·受损视神经转染细胞移植后的存活和迁移 | 第42-43页 |
| ·受损视神经的组织结构和细胞密度 | 第43-45页 |
| ·受损视神经Nestin、GFAP、MBP、NF、ERK1/2 表达的变化 | 第45-51页 |
| ·受损视神经外加bFGF 和CNTF 后的基因表达谱 | 第51-62页 |
| ·受损视神经移植毛囊神经干细胞后的基因表达谱 | 第62-65页 |
| ·实时荧光定量PCR 验证基因芯片结果 | 第65-66页 |
| 4. 讨论 | 第66-77页 |
| ·动物模型的可靠性和意义 | 第66-67页 |
| ·毛囊神经干细胞具有向神经细胞分化的优势 | 第67页 |
| ·毛囊神经干细胞两种标记方法的比较 | 第67-68页 |
| ·毛囊神经干细胞在受损视神经中的命运 | 第68页 |
| ·毛囊神经干细胞修复视神经损伤并促进大胶质细胞去分化 | 第68-72页 |
| ·毛囊神经干细胞通过调节Spp1、Igf2 表达，保护受损视神经细胞并促进其增殖 | 第68-69页 |
| ·毛囊神经干细胞促进受损视神经大胶质细胞去分化，并增强其Wnt、ERK、Notch 通路 | 第69-71页 |
| ·毛囊神经干细胞调节视神经生长相关基因表达，促进轴突再生 | 第71-72页 |
| ·bFGF 促进受损视神经神经胶质细胞去分化并促进其轴突再生 | 第72-74页 |
| ·bFGF 通过调节ERK1/2、AKT1、Eaf2、Igfbp1、Cyr61 表达,保护受损视神经胶质细胞并促进其增殖 | 第72-73页 |
| ·bFGF 促进受损视神经胶质细胞去分化，并增强其STAT、MAPK、Wnt 通路 | 第73页 |
| ·bFGF 通过调节胶质细胞黏附分子和生长因子表达，促进受损视神经轴突再生 | 第73-74页 |
| ·CNTF 促进受损视神经大胶质细胞去分化及轴突再生 | 第74-77页 |
| ·CNTF 通过调节Eaf2、Git1 表达，保护受损视神经胶质细胞并促进其增殖 | 第74页 |
| ·CNTF 促进受损视神经胶质细胞去分化，并增强其Wnt、ERK 通路 | 第74-75页 |
| ·CNTF 通过调节胶质细胞黏附分子和生长因子表达，促进受损视神经轴突再生 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 全文小结 | 第81-82页 |
| 本课题的创新点和意义 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 文献综述 | 第85-94页 |
| 攻读硕士期间发表的论文 | 第94页 |
