C-末端酰胺化酶的分离纯化
| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-24页 |
| 1.酰胺化酶概述 | 第12-14页 |
| 2.酰胺化酶研究现状 | 第14-20页 |
| 3.高效毛细管电泳在蛋白和多肽分离分析中的应用 | 第20-22页 |
| 4.东亚钳蝎与酰胺化酶 | 第22-23页 |
| 5.立题依据及目的 | 第23-24页 |
| 第二章 材料与方法 | 第24-37页 |
| 1.实验材料 | 第24-25页 |
| 2.实验方法 | 第25-37页 |
| ·酰胺化酶的提取纯化 | 第25-28页 |
| ·毛细管电泳检测酰胺化酶活性 | 第28-30页 |
| ·不连续-SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第30-32页 |
| ·分子量测定—SDS-PAGE法 | 第32页 |
| ·糖蛋白染色 | 第32-33页 |
| ·等电聚焦电泳测定等电点 | 第33-35页 |
| ·紫外光谱扫描 | 第35页 |
| ·酰胺化酶部分酶学性质的研究 | 第35-36页 |
| ·酰胺化酶对其它底物活性的研究 | 第36-37页 |
| 第三章 实验结果 | 第37-53页 |
| 1.毛细管电泳检测酰胺化酶活性 | 第37-40页 |
| 2.分级分离实验结果 | 第40-41页 |
| 3.第一次柱层析结果 | 第41-42页 |
| 4.第二次柱层析结果 | 第42-43页 |
| 5.第三次柱层析结果 | 第43-44页 |
| 6.第四次柱层析结果 | 第44-45页 |
| 7.第五次柱层析结果 | 第45-46页 |
| 8.分离纯化过程中酶的转化率 | 第46页 |
| 9.SDS-PAGE电泳结果 | 第46-47页 |
| 10.酰胺化酶的分子量的测定 | 第47页 |
| 11.糖蛋白染色结果 | 第47页 |
| 12.酰胺化酶等电点的测定 | 第47-48页 |
| 13.酰胺化酶紫外光谱扫描图 | 第48-49页 |
| 14.酰胺化酶部分酶学性质的考察 | 第49-51页 |
| 15.酰胺化酶酰胺化酶对降钙素的活性 | 第51-53页 |
| 第四章 讨论 | 第53-58页 |
| 1.酰胺化酶活性检测系统的建立 | 第53-54页 |
| 2.原料的选取 | 第54-55页 |
| 3.分离纯化中的相关问题 | 第55-56页 |
| 4.关于纯化过程中酰胺化酶活性损失的问题 | 第56页 |
| 5.酰胺化酶对温度的稳定性 | 第56-57页 |
| 6.其它 | 第57-58页 |
| 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
