| 英 文 缩 略 词 表 | 第1-8页 |
| 中 文 摘 要 | 第8-10页 |
| 1 引 言 | 第10-25页 |
| ·小尾寒羊的简介 | 第10-14页 |
| ·小尾寒羊的产地特点 | 第10-11页 |
| ·小尾寒羊的适应性 | 第11页 |
| ·小尾寒羊的生长发育特点 | 第11页 |
| ·小尾寒羊的产肉性能和肉质特征 | 第11-12页 |
| ·小尾寒羊的毛质特征 | 第12页 |
| ·小尾寒羊的生理生化指标 | 第12页 |
| ·小尾寒羊的繁殖性能 | 第12-14页 |
| ·小尾寒羊的利用 | 第14页 |
| ·BMPs、BMPR-IB 基因的研究 | 第14-22页 |
| ·BMPs 的结构和生物学功能 | 第15-16页 |
| ·骨骼形态发生蛋白受体的种类和结构 | 第16-17页 |
| ·骨骼形态发生蛋白受体的信号传递机制 | 第17-18页 |
| ·骨骼形态发生蛋白受体的生物学功能 | 第18-19页 |
| ·BMPs 基因和 BMPR-IB 基因与繁殖性能的关系 | 第19-22页 |
| ·PCR-SSCP 技术 | 第22-25页 |
| ·SSCP 的建立与发展 | 第22-23页 |
| ·PCR-SSCP 方法的原理 | 第23页 |
| ·PCR-SSCP 的特点 | 第23-24页 |
| ·PCR-SSCP 方法的应用 | 第24-25页 |
| 2 材料和方法 | 第25-39页 |
| ·试验材料 | 第25-28页 |
| ·试验绵羊来源及采样方法 | 第25页 |
| ·药品和酶 | 第25-26页 |
| ·主要仪器设备 | 第26页 |
| ·有关试剂和溶液的配制 | 第26-28页 |
| ·实验方法 | 第28-33页 |
| ·羊血液 DNA 的提取 | 第28-30页 |
| ·DNA 浓度和纯度的检测 | 第30页 |
| ·SSCP 分析方法的一般程序 | 第30-33页 |
| ·BMPR-IB 基因 Q249R 突变区的纯合子个体的克隆测序 | 第33-38页 |
| ·目的片段的回收 | 第33-34页 |
| ·连接反应 | 第34-35页 |
| ·感受态细胞的制备-氯化钙法 | 第35-36页 |
| ·转化 | 第36页 |
| ·质粒 DNA 的小规模提取-碱裂解法 | 第36-37页 |
| ·重组质粒的鉴定 | 第37-38页 |
| ·统计分析方法 | 第38-39页 |
| ·群体基因频率和基因型频率的计算 | 第38页 |
| ·绵羊骨骼形态发生蛋白受体基因位点 Hardy-Weinberg 平衡状态的检验 | 第38-39页 |
| ·绵羊骨骼形态发生蛋白受体基因基因型的独立性检验 | 第39页 |
| ·绵羊骨骼形态发生蛋白受体基因位点与小尾寒羊繁殖力关系的研究 | 第39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-44页 |
| ·BMPR-IB 基因 Q249R 突变区的 PCR 扩增 | 第39-40页 |
| ·BMPR-IB 基因 Q249R 突变区的 SSCP 检测 | 第40-41页 |
| ·测序结果 | 第41页 |
| ·不同绵羊品种 BMPR-IB 基因型频率和基因频率分析 | 第41-42页 |
| ·不同绵羊品种 BMPR-IB 基因型分布差异检验 | 第42-43页 |
| ·不同 BMPR-IB 基因型的小尾寒羊产羔数 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44-49页 |
| ·实验材料的选择 | 第44页 |
| ·最佳 PCR 条件的建立 | 第44-45页 |
| ·琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第45页 |
| ·FecB 基因的作用位点 | 第45-46页 |
| ·BMPR-IB 基因 Q249R 突变的检测 | 第46-48页 |
| ·BMPR-IB 基因 Q249R 突变对绵羊产羔数的影响 | 第48-49页 |
| 5 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| ABSTRACT | 第55-57页 |
| 致 谢 | 第57-58页 |
| 读研期间发表的文章: | 第58页 |
