| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-18页 |
| 1 乳腺癌 | 第11-14页 |
| ·肿瘤的发生机制 | 第11-12页 |
| ·p53 与细胞周期 | 第12页 |
| ·bcl-2 基因家族与细胞凋亡 | 第12-14页 |
| 2 EGCG 抗肿瘤机制 | 第14-16页 |
| ·EGCG 的结构与含量 | 第14-15页 |
| ·EGCG 与细胞凋亡 | 第15-16页 |
| 3 本研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 第二章 EGCG 诱导犬乳腺癌细胞凋亡试验研究 | 第18-39页 |
| 1 材料 | 第18-20页 |
| ·细胞系 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18页 |
| ·主要仪器 | 第18-19页 |
| ·主要试剂的配置 | 第19-20页 |
| ·DMEM 培养液 | 第19页 |
| ·细胞冻存液 | 第19页 |
| ·无 Ca2+、Mg2+ PBS 缓冲液 | 第19-20页 |
| 2 方法 | 第20-24页 |
| ·细胞复苏 | 第20页 |
| ·细胞的传代培养 | 第20页 |
| ·细胞冻存 | 第20页 |
| ·细胞计数 | 第20-21页 |
| ·噻唑盐（MTT）比色试验 | 第21页 |
| ·流式细胞仪检测细胞周期 | 第21页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第21-22页 |
| ·bax、p53、bcl-2 mRNA 表达量的 RT-PCR 监测 | 第22-24页 |
| ·试验分组 | 第22页 |
| ·mRNA 的提取 | 第22-23页 |
| ·cDNA 的合成 | 第23页 |
| ·Real-time PCR 法对目的基因的表达相对定量 | 第23-24页 |
| 3 数据统计 | 第24-25页 |
| 4 结果 | 第25-34页 |
| ·培养的 CMT1211 细胞形态学观察 | 第25-26页 |
| ·正常的 CMT1211 细胞形态 | 第25页 |
| ·不同剂量 EGCG 在不同时间点对 CMT1211 细胞形态的观察 | 第25-26页 |
| ·不同浓度的 EGCG 在不同时间点对 CMT1211 细胞增殖的影响 | 第26-27页 |
| ·不同浓度 EGCG 在不同时间点对 CMT1211 细胞凋亡的影响 | 第27-30页 |
| ·不同浓度的 EGCG 在 24h 时对 CMT1211 细胞周期的影响 | 第30-33页 |
| ·EGCG 作用 CMT1211 细胞 24h 时对 bax、bcl-2、p53 mRNA 的影响 | 第33-34页 |
| 5 讨论 | 第34-37页 |
| 6 小结 | 第37-39页 |
| 第三章 EGCG 对犬乳腺癌细胞小鼠异位移植瘤模型的作用研究 | 第39-48页 |
| 1 材料 | 第39-40页 |
| ·试验动物 | 第39页 |
| ·细胞株 | 第39-40页 |
| ·主要试剂 | 第40页 |
| 2 试验方法 | 第40-43页 |
| ·犬乳腺癌细胞（CMT1211）小鼠异种移植瘤模型的建立 | 第40页 |
| ·动物分组及用药 | 第40页 |
| ·抑瘤率观察 | 第40-41页 |
| ·利用 RNAiso 提取肿瘤组织中总的 RNA | 第41页 |
| ·cDNA 的合成 | 第41-42页 |
| ·Real-time PCR 法对目的基因的表达相对定量 | 第42-43页 |
| 3 数据统计 | 第43页 |
| 4 结果 | 第43-45页 |
| ·EGCG 对犬乳腺癌细胞小鼠移植瘤生长的抑制作用 | 第43-45页 |
| ·Real-time PCR 测 EGCG 对 CMT1211 ICR 小鼠异体移植瘤凋亡的影响 | 第45页 |
| 5 讨论 | 第45-47页 |
| 6 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 结论、创新点和展望 | 第48-49页 |
| 1 结论 | 第48页 |
| 2 创新点 | 第48页 |
| 3 展望 | 第48-49页 |
| 附录 | 第49-52页 |
| 参考文献 | 第52-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
