缩略语表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-13页 |
ABSTRACT | 第13-17页 |
前言 | 第18-20页 |
文献回顾 | 第20-38页 |
第一部分 炎性环境下ECS对PDLSCS成骨分化能力的影响 | 第38-53页 |
1 材料 | 第39-41页 |
1.1 主要试剂和材料 | 第39-40页 |
1.2 主要抗体 | 第40页 |
1.3 主要溶液配方 | 第40-41页 |
1.4 主要仪器设备 | 第41页 |
2 方法 | 第41-48页 |
2.1 细胞培养 | 第41-43页 |
2.2 蛋白免疫印迹法(Western blot) | 第43-45页 |
2.3 实时定量聚合酶链式反应(Quantitative Real-time Polymerase Chain Reaction,qRT-PCR) | 第45-47页 |
2.4 细胞凋亡检测 | 第47页 |
2.5 统计分析 | 第47-48页 |
3 结果 | 第48-51页 |
3.1 HPDLSCs和IPDLSCs在ECs影响下成骨分化能力的变化 | 第48-49页 |
3.2 ECCM对于正常及炎症微环境中PDLSCs的成骨分化能力无显著影响 | 第49-50页 |
3.3 正常与炎症环境下PDLSCs与ECs共培养后成骨分化能力均降低 | 第50-51页 |
3.4 ECs减弱了正常及炎症环境下PDLSCs的凋亡水平 | 第51页 |
4 讨论 | 第51-53页 |
第二部分 炎性环境对PDLSCS促ECS血管形成能力的影响 | 第53-73页 |
1 材料 | 第54-57页 |
1.1 主要试剂 | 第54-55页 |
1.2 主要抗体 | 第55页 |
1.3 主要溶液配方 | 第55-56页 |
1.4 主要仪器 | 第56-57页 |
2 方法 | 第57-63页 |
2.1 苏木精-伊红染色法(Hemaoxylin-eosin staining,HE染色) | 第57-58页 |
2.2 免疫组织化学染色法 | 第58-59页 |
2.3 细胞培养 | 第59-60页 |
2.4 中和抗体实验(Neutralization) | 第60页 |
2.5 Western Blot | 第60-61页 |
2.6 qRT-PCR | 第61页 |
2.7 酶联免疫吸附测定(Enzyme linked immunosorbent assay,ELISA) | 第61-62页 |
2.8 基质胶管腔形成试验 | 第62-63页 |
2.9 统计分析 | 第63页 |
3 结果 | 第63-71页 |
3.1 炎症牙周膜组织较正常牙周膜组织VEGF表达增高 | 第63-65页 |
3.2 炎性环境下PDLSCs表达VEGF增高 | 第65页 |
3.3 炎性环境中的PDLSCs促进ECs血管形成能力更高 | 第65-68页 |
3.4 炎性PDLSCs促ECs血管形成能力随炎性因子作用的时间先升高,后有所降低 | 第68-69页 |
3.5 ERK信号通路对炎性环境下PDLSCs分泌VEGF起调控作用 | 第69-70页 |
3.6 ERK信号通路参与调控了炎性PDLSCs促ECs生成血管的能力 | 第70-71页 |
4 讨论 | 第71-73页 |
第三部分 自噬对于PDLSCS促ECS血管形成能力的影响 | 第73-86页 |
1 材料 | 第74-76页 |
1.1 主要试剂 | 第74页 |
1.2 主要抗体 | 第74页 |
1.3 溶液配方 | 第74-75页 |
1.4 主要仪器 | 第75-76页 |
2 方法 | 第76-78页 |
2.1 细胞培养 | 第76-77页 |
2.2 Western Blot | 第77页 |
2.3 qRT-PCR | 第77-78页 |
2.4 基质胶管腔形成试验 | 第78页 |
2.5 统计学分析 | 第78页 |
3 结果 | 第78-83页 |
3.1 PDLSCs的自噬水平随炎性因子刺激时间的延长先升高后有所降低 | 第78-79页 |
3.2 ERK可以正向调控PDLSCs的自噬水平 | 第79-80页 |
3.3 提高长期炎症环境下PDLSCs的自噬水平可增加其促ECs成血管能力 | 第80-82页 |
3.4 降低炎性PDLSCs自噬水平其促ECs血管形成能力也降低 | 第82-83页 |
4 讨论 | 第83-86页 |
小结 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-102页 |
个人简历和研究成果 | 第102-103页 |
致谢 | 第103-104页 |