| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-22页 |
| ·Treg与Foxp3 | 第12-20页 |
| ·调节性T细胞 | 第12-13页 |
| ·Foxp3与FOX家族 | 第13-15页 |
| ·Foxp3与Treg细胞表面标记的表达 | 第15-18页 |
| ·CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞与临床 | 第18-19页 |
| ·FOXP3发挥抑制功能的机制 | 第19-20页 |
| ·PTD简介 | 第20-22页 |
| 第二章 研究目的、方法、实验设计方案和意义 | 第22-24页 |
| ·研究目的、方法 | 第22页 |
| ·实验方案的设计 | 第22页 |
| ·本研究的意义 | 第22-24页 |
| 第三章 实验材料 | 第24-28页 |
| ·细胞系 | 第24页 |
| ·实验菌株和质粒 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·其他试剂及材料 | 第24页 |
| ·实验动物 | 第24页 |
| ·主要仪器 | 第24-25页 |
| ·主要溶液 | 第25-28页 |
| 第四章 实验方法 | 第28-38页 |
| ·pET28a-PTD-eGFP-hFOXP3及pET28a-PTD-hFOXP3重组载体的构建 | 第28-33页 |
| ·pET28a-PTD-eGFP-hFOXP3重组载体的构建 | 第28-32页 |
| ·pET28a-PTD-hFOXP3重组载体的构建 | 第32-33页 |
| ·两种融合蛋白的表达、纯化 | 第33-35页 |
| ·PTD-eGFP-FOXP3和PTD-FOXP3融合蛋白的表达 | 第33-34页 |
| ·融合蛋白的SDS-PAGE电泳鉴定 | 第34页 |
| ·两种融合蛋白的溶解性分析 | 第34页 |
| ·融合蛋白纯化 | 第34-35页 |
| ·融合蛋白鉴定(Western blot) | 第35页 |
| ·蛋白去盐 | 第35页 |
| ·融合蛋白的功能试验(与许逊、蔺昕合作) | 第35-38页 |
| ·融合蛋白穿膜能力分析 | 第35-36页 |
| ·细胞增殖实验 | 第36-38页 |
| 第五章 实验结果与讨论 | 第38-54页 |
| ·pET28a-PTD-eGFP-hFOXP3和pET28a-PTD-hFOXP3重组质粒的鉴定 | 第38-46页 |
| ·pET28a-PTD-eGFP-hFOXP3重组质粒的鉴定 | 第38-43页 |
| ·pET28a-PTD-hFOXP3重组质粒的鉴定 | 第43-44页 |
| ·PTD-eGFP-FOXP3和PTD-FOXP3融合蛋白可溶性分析 | 第44-45页 |
| ·PTD-eGFP-hFOXP3和PTD-hFOXP3融合蛋白的纯化 | 第45-46页 |
| ·PTD-eGFP-hFOXP3和PTD-hFOXP3融合蛋白的鉴定 | 第46页 |
| ·融合蛋白穿膜功能的检测结果 | 第46-51页 |
| ·PTD-eGFP-FOXP3融合蛋白穿膜的FCS分析 | 第46-49页 |
| ·荧光显微镜及激光共聚焦显微镜观察结果 | 第49-50页 |
| ·融合蛋白穿膜功能的western blot分析 | 第50-51页 |
| ·细胞增殖实验结果 | 第51-53页 |
| ·Jurkat细胞活化条件的确立 | 第51-52页 |
| ·CCK8法检测融合蛋白对Jurkat细胞增殖的影响 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-54页 |
| 第六章 主要结论及展望 | 第54-56页 |
| ·主要结论 | 第54页 |
| ·展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 英文缩写索引 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第67页 |
