摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-18页 |
第一章 绪论 | 第18-31页 |
·静磁场及其生物效应 | 第18-23页 |
·静磁场 | 第18页 |
·SMF 的生物效应 | 第18-23页 |
·有机污染物的细菌治理 | 第23-27页 |
·导言 | 第23-24页 |
·细菌治理法的优势 | 第24页 |
·典型有机污染物--偶氮染料 | 第24-27页 |
·偶氮染料简介 | 第24-25页 |
·偶氮染料废水的危害 | 第25-26页 |
·偶氮染料废水处理技术进展 | 第26-27页 |
·强化偶氮染料废水降解 | 第27-29页 |
·中强SMF 的作用 | 第27-28页 |
·SSMF 技术的探索进展 | 第28-29页 |
·问题的提出 | 第29页 |
·论文的目的及研究内容 | 第29-31页 |
·研究目的 | 第29-30页 |
·内容与思路 | 第30页 |
·主要创新点 | 第30-31页 |
第二章 细菌 SSMF 生物效应的抗性及形态学特征 | 第31-40页 |
·引言 | 第31页 |
·材料和方法 | 第31-33页 |
·主要材料 | 第31页 |
·方法 | 第31-33页 |
·处理菌株的制备 | 第31-32页 |
·抗性突变实验 | 第32-33页 |
·形态观察 | 第33页 |
·结果与讨论 | 第33-39页 |
·青霉素抗性分析 | 第33-36页 |
·菌落形态分析 | 第36-39页 |
·SSMF 作用的影响 | 第36-37页 |
·UV 作用的影响 | 第37-39页 |
·小结 | 第39-40页 |
第三章 SSMF 细菌生物效应的 FTIR 光谱研究 | 第40-60页 |
·引言 | 第40-41页 |
·材料和方法 | 第41-44页 |
·主要材料 | 第41页 |
·方法 | 第41-44页 |
·SSMF 处理菌株的制备 | 第41页 |
·DNA 样品制备 | 第41-42页 |
·FTIR 光谱测定 | 第42页 |
·FTIR-聚类分析 | 第42-43页 |
·FTIR-去卷积 | 第43-44页 |
·曲线拟合 | 第44页 |
·结果与讨论 | 第44-59页 |
·SSMF 与细胞FTIR 光谱的关系 | 第44-52页 |
·FTIR 光谱 | 第44-46页 |
·FTIR-聚类分析 | 第46-48页 |
·SSMF 主要影响区间分析 | 第48-49页 |
·混合带的去卷积-曲线拟合 | 第49-52页 |
·SSMF 与E.coli 生物大分子的关系 | 第52-59页 |
·蛋白质二级结构的分析 | 第52-56页 |
(一) 酰胺Ⅰ 带FTIR 光谱图 | 第52-53页 |
(二) 酰胺Ⅰ 带FTIR-聚类分析 | 第53页 |
(三) 酰胺Ⅰ 带的去卷积-曲线拟合 | 第53-56页 |
·DNA 分子的分析 | 第56-59页 |
(一) FTIR 光谱图 | 第56-57页 |
(二) FTIR-聚类分析 | 第57-58页 |
(三) 特征吸收峰分析 | 第58-59页 |
·小结 | 第59-60页 |
第四章 SSMF 细菌生物效应在降解偶氮染料中的应用 | 第60-88页 |
·引言 | 第60-61页 |
·材料和方法 | 第61-65页 |
·主要材料 | 第61页 |
·脱色菌株 | 第61页 |
·细胞材料 | 第61页 |
·主要试剂及偶氮染料 | 第61页 |
·引物 | 第61页 |
·方法 | 第61-65页 |
·野生脱色菌株的获得 | 第61-62页 |
·SSMF 处理菌株的制备 | 第62页 |
·E coli 基因组DNA 的制备 | 第62页 |
·E coli 基因组DNA 凝胶检验 | 第62页 |
·PCR 扩增 | 第62页 |
·基因克隆 | 第62-63页 |
·DNA 片段序列分析 | 第63页 |
·B1 菌株细胞成分的制备 | 第63页 |
·B1 菌株酶液的制备 | 第63-64页 |
·B1 菌株盐析酶的FTIR 测定 | 第64页 |
·脱色实验 | 第64-65页 |
·UV-Vis 及DO 测定 | 第65页 |
·结果与讨论 | 第65-87页 |
·SSMF 作用对E coli 的影响 | 第65-78页 |
·基因组DNA | 第65-66页 |
·PCR 产物 | 第66页 |
·连接结果 | 第66-67页 |
·阳性克隆 | 第67-68页 |
·基因序列分析 | 第68-70页 |
(一) SSMF 处理前的基因序列 | 第68-69页 |
(二) SSMF 处理后的基因序列 | 第69-70页 |
·偶氮还原酶分析 | 第70-73页 |
(一) AzoR 分析 | 第70-71页 |
(二) AzoR-SSMF_8分析 | 第71-73页 |
·SSMF 作用与细胞脱色的关系 | 第73-78页 |
(一) 脱色圈 | 第73-74页 |
(二) 脱色曲线 | 第74-75页 |
(三) 溶解氧敏感性 | 第75-76页 |
(四) 降解光谱 | 第76-78页 |
·SSMF 作用对B1 菌株的影响 | 第78-87页 |
·AZR 的定位 | 第78-79页 |
·SSMF 作用对粗酶活力的影响 | 第79页 |
·SSMF 作用对盐析酶活力的影响 | 第79-81页 |
(一) 最适反应温度 | 第79-80页 |
(二) 最适脱色反应pH | 第80-81页 |
·SSMF 作用对盐析酶FTIR 光谱的影响 | 第81页 |
·SSMF 作用与细胞脱色的关系 | 第81-87页 |
(一) 脱色曲线 | 第81-83页 |
(二) 降解反应参数 | 第83-84页 |
(三) 最佳菌液量 | 第84-85页 |
(四) 降解光谱 | 第85-87页 |
·小结 | 第87-88页 |
第五章 结论与展望 | 第88-91页 |
·结论 | 第88-90页 |
·展望 | 第90-91页 |
博士期间已完成的工作 | 第91-92页 |
致谢 | 第92-93页 |
参考文献 | 第93-111页 |
附录一 溶液、培养基的制备 | 第111-113页 |
附录二 实验试剂 | 第113-115页 |
附录三 实验仪器 | 第115-116页 |
附录四 牛血清蛋白浓度标准曲线的制作 | 第116页 |