| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语 | 第13-14页 |
| 绪论 | 第14-15页 |
| 第一篇 文献综述 | 第15-35页 |
| 第一章 鸭坦布苏病毒 | 第15-29页 |
| 1 鸭坦布苏病毒的流行病学 | 第15-16页 |
| 2 鸭坦布苏病毒的病原特征 | 第16-22页 |
| 2.1 病毒粒子的性质 | 第16-17页 |
| 2.2 DTMUV病毒基因结构 | 第17-18页 |
| 2.3 宿主及传播机制 | 第18-19页 |
| 2.4 5'非编码区和3'非编码区 | 第19页 |
| 2.5 结构蛋白 | 第19-21页 |
| 2.6 非结构蛋白 | 第21-22页 |
| 3 检测 | 第22-23页 |
| 3.1 血清学检测方法 | 第22页 |
| 3.2 分子生物学检测方法 | 第22-23页 |
| 4 预防 | 第23-25页 |
| 4.1 生物安全预防 | 第23页 |
| 4.2 疫苗预防 | 第23-24页 |
| 4.3 药物预防 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 第二章 黄病毒大小斑产生机制及对病毒毒力影响概述 | 第29-35页 |
| 1 影响黄病毒噬斑表型差异的因素 | 第29-31页 |
| 1.1 结构蛋白单个氨基酸对黄病毒噬斑表型差异的影响 | 第29-30页 |
| 1.2 非结构蛋白单个氨基酸差异对黄病毒噬斑表型的影响 | 第30页 |
| 1.3 sfRNA对黄病毒噬斑表型差异影响 | 第30-31页 |
| 2 黄病毒噬斑表型差异对病毒毒力和神经侵袭力的影响 | 第31-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二篇 实验研究 | 第35-73页 |
| 第三章 鸭坦步苏病毒XZ2012株大小噬斑准种株的分离与基因特征研究 | 第35-55页 |
| 1 材料与方法 | 第35-41页 |
| 1.1 材料 | 第35-36页 |
| 1.2 方法 | 第36-41页 |
| 2 实验结果 | 第41-51页 |
| 2.1 鸭坦布苏病毒XZ2012株病毒滴度的测定及噬斑形态 | 第41-42页 |
| 2.2 鸭坦布苏病毒不同大小噬斑准种的分离 | 第42页 |
| 2.3 鸭坦布苏病毒不同大小噬斑准种全基因测序 | 第42-43页 |
| 2.4 四株疫苗病毒的基因序列比较 | 第43-45页 |
| 2.5 基因进化树分析 | 第45-47页 |
| 2.6 四株疫苗病毒的氨基酸序列比较 | 第47-48页 |
| 2.7 E62处差异分析 | 第48-50页 |
| 2.8 XZ2012核苷酸位置10699处差异分析 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 第四章 鸭坦布苏病毒XZ2012株大斑准种L1和小斑准种S1生物特性研究 | 第55-73页 |
| 1 材料与方法 | 第55-61页 |
| 1.1 材料 | 第55-56页 |
| 1.2 方法 | 第56-61页 |
| 2 实验结果 | 第61-68页 |
| 2.1 DTMUV XZ2012株大斑准种L1和小斑S1准种在BHK-21、Vero和DF-1细胞上的噬斑表型一致 | 第61页 |
| 2.2 DTMUV基因含量的测定方法的建立 | 第61-62页 |
| 2.3 DTMUV大斑L1和小斑S1在BHK-21细胞上病毒生长曲线的差异分析 | 第62-63页 |
| 2.4 DTMUV大斑L1和小斑S1在C6/36细胞上子代病毒生长曲线的差异分析 | 第63-64页 |
| 2.5 DTMUV大斑L1和小斑S1在SPF鸭胚上ELD_(50)的测定 | 第64-66页 |
| 2.6 DTMUV大斑L1和小斑S1准种致死鸭胚病变表现 | 第66页 |
| 2.7 鸭胚传代对病毒噬斑表型的影响 | 第66-67页 |
| 2.8 包被抗原DTMUV-ED3的表达与纯化 | 第67页 |
| 2.9 最佳包被抗原浓度的确定 | 第67-68页 |
| 2.10 DTMUV大斑准种L1和小斑准种S1灭活后免疫小鼠抗体水平差异 | 第68页 |
| 3 讨论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 结论与展望 | 第73-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 个人简历 | 第77页 |
