缩略词一览表 | 第4-6页 |
摘要 | 第6-9页 |
abstract | 第9-11页 |
前言 | 第12-20页 |
1.选题背景及意义 | 第12-13页 |
2.聚乳酸的研究进展概述 | 第13-14页 |
2.1 聚乳酸的合成及降解 | 第13-14页 |
2.2 乳酸的生物学功能 | 第14页 |
3.内皮细胞及其血管内皮化的研究概述 | 第14-16页 |
3.1 血管内皮及内皮细胞的研究 | 第14-15页 |
3.2 血管支架置入后内皮损伤及再内皮化 | 第15-16页 |
4.影响血管内皮化相关因子研究概述 | 第16-18页 |
4.1 VEGF与血管相互作用研究概述 | 第16-18页 |
4.2 eNOS/NO与血管相互作用的研究概述 | 第18页 |
5.论文设计 | 第18-20页 |
第一章 支架涂层材料、主体材料鉴别及降解 | 第20-34页 |
1.1 实验仪器 | 第20页 |
1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
1.3 实验方法 | 第21-24页 |
1.3.1 支架涂层材料、主体材料鉴别 | 第21-23页 |
1.3.1.1 NMR测定支架涂层材料、主体材料主成分 | 第21-22页 |
1.3.1.2 GC测定支架涂层材料、主体材料的单体丙交酯残留 | 第22-23页 |
1.3.2 生物可吸收支架材料的降解 | 第23-24页 |
1.4 实验结果 | 第24-31页 |
1.4.1 支架涂层材料、主体材料鉴别 | 第24-27页 |
1.4.1.1 NMR鉴别支架涂层材料、主体材料 | 第24-26页 |
1.4.1.2 GC测定支架涂层材料、主体材料丙交酯残留 | 第26-27页 |
1.4.2 可吸收支架降解 | 第27-31页 |
1.5 本章小结 | 第31-34页 |
第二章 体外细胞支架复合培养 | 第34-41页 |
2.1 实验仪器 | 第34-35页 |
2.2 实验试剂 | 第35页 |
2.3 实验步骤 | 第35-37页 |
2.3.1 HUVEC细胞的复苏与培养 | 第35-36页 |
2.3.2 体外细胞复合支架培养荧光染色 | 第36页 |
2.3.3 体外细胞复合支架培养扫描电镜观察 | 第36-37页 |
2.4 实验结果 | 第37-39页 |
2.4.1 细胞复合支架体外共培养荧光染色 | 第37-38页 |
2.4.2 体外细胞复合支架培养扫描电镜观察 | 第38-39页 |
2.5 本章小结 | 第39-41页 |
第三章 支架材料血管内皮化作用在细胞水平的影响 | 第41-54页 |
3.1 实验仪器 | 第41-42页 |
3.2 实验试剂 | 第42页 |
3.3 实验方法 | 第42-46页 |
3.3.1 HUVEC细胞增殖实验方法 | 第42-43页 |
3.3.2 HUVEC细胞迁移实验方法 | 第43-45页 |
3.3.3 血管样结构(TubuleLikeStructure,TLS)形成实验方法 | 第45-46页 |
3.4 实验结果 | 第46-52页 |
3.4.1 HUVEC细胞增殖结果 | 第46-47页 |
3.4.2 HUVEC细胞迁移结果 | 第47-49页 |
3.4.3 血管样结构(tubulelikestructure,TLS)形成结果 | 第49-52页 |
3.5 本章小结 | 第52-54页 |
第四章 支架材料血管内皮化作用在分子水平的影响 | 第54-64页 |
4.1 实验仪器 | 第54页 |
4.2 实验试剂 | 第54-55页 |
4.3 实验方法 | 第55-59页 |
4.3.1 支架材料对VEGF、eNOS基因表达的影响 | 第55-58页 |
4.3.2 支架对VEGF蛋白、NO分子表达的影响 | 第58-59页 |
4.3.2.1 细胞培养上清收集 | 第58页 |
4.3.2.2 VEGF蛋白含量测定 | 第58页 |
4.3.2.3 NO含量测定 | 第58-59页 |
4.4 实验结果 | 第59-62页 |
4.4.1 支架涂层材料对VEGFmRNA表达的影响 | 第59-60页 |
4.4.2 支架涂层材料对eNOSmRNA表达的影响 | 第60-61页 |
4.4.3 支架涂层材料对VEGF蛋白表达的影响 | 第61-62页 |
4.4.4 支架涂层材料对NO生成的影响 | 第62页 |
4.5 本章小结 | 第62-64页 |
第五章 总结与展望 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-74页 |
综述 | 第74-86页 |
参考文献 | 第83-86页 |
研究生在读期间发表的论文 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-88页 |