| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第13-24页 |
| 1.1 大黄鱼概况 | 第13页 |
| 1.2 研究背景 | 第13-24页 |
| 1.2.1 鱼类TLR的鉴定 | 第15页 |
| 1.2.2 鱼类TLR超家族 | 第15-19页 |
| 1.2.3 鱼类TLR介导的免疫信号传导 | 第19-22页 |
| 1.2.4 鱼类TLR信号途径负调控 | 第22页 |
| 1.2.5 结语 | 第22-24页 |
| 第2章 大黄鱼TLR家族部分基因的克隆与表达 | 第24-59页 |
| 2.1 材料和方法 | 第24-34页 |
| 2.1.1 材料 | 第24-26页 |
| 2.1.2 大黄鱼TLR1、TLR2基因的cDNA克隆 | 第26-31页 |
| 2.1.3 大黄鱼TLR1、TLR2基因组织表达及刺激表达分析 | 第31-32页 |
| 2.1.4 大黄鱼TLR21基因的cDNA克隆 | 第32-33页 |
| 2.1.5 大黄鱼TLR21基因组织表达及刺激表达分析 | 第33-34页 |
| 2.2 结果 | 第34-55页 |
| 2.2.1 大黄鱼TLR1、TLR2全长cDNA克隆与分析 | 第34-41页 |
| 2.2.2 大黄鱼TLR1、TLR2表达分析 | 第41-48页 |
| 2.2.3 大黄鱼TLR21全长cDNA克隆与分析 | 第48-50页 |
| 2.2.4 大黄鱼TLR21表达分析 | 第50-55页 |
| 2.3 讨论 | 第55-59页 |
| 2.3.1 TLR1家族基因 | 第55-57页 |
| 2.3.2 TLR21 | 第57-59页 |
| 第3章 大黄鱼NF-ΚB途径部分基因克隆与表达研究 | 第59-103页 |
| 3.1 材料和方法 | 第59-65页 |
| 3.1.1 材料 | 第59页 |
| 3.1.2 大黄鱼p65、p52、c-rel和IκB的cDNA扩增 | 第59-62页 |
| 3.1.3 大黄鱼p65、p52、c-rel和IκB基因组织表达及刺激表达分析 | 第62-63页 |
| 3.1.4 大黄鱼IL-11、IL-21的cDNA扩增 | 第63-65页 |
| 3.1.5 大黄鱼IL-11、IL-21基因组织表达及刺激表达分析 | 第65页 |
| 3.2 结果 | 第65-99页 |
| 3.2.1 大黄鱼p65、p52、c-rel和IκB的cDNA克隆与分析 | 第65-74页 |
| 3.2.2 大黄鱼NF-κB途径中p65、p52、c-rel和IκB表达分析 | 第74-87页 |
| 3.2.3 大黄鱼IL-11、IL-21全长cDNA克隆与分析 | 第87-91页 |
| 3.2.4 大黄鱼IL-11、IL-21表达分析 | 第91-99页 |
| 3.3 讨论 | 第99-103页 |
| 3.3.1 NF-κB调控相关基因 | 第99-101页 |
| 3.3.2 大黄鱼IL-11、IL-21基因 | 第101-103页 |
| 第4章 大黄鱼TLR途径部分因子的重组表达 | 第103-116页 |
| 4.1 材料和方法 | 第103-109页 |
| 4.1.1 材料 | 第103-104页 |
| 4.1.2 MyD88原核表达诱导及纯化 | 第104-107页 |
| 4.1.3 IL-1β原核表达诱导及纯化 | 第107-108页 |
| 4.1.4 IL-21原核表达诱导及纯化 | 第108-109页 |
| 4.2 结果 | 第109-114页 |
| 4.2.1 MyD88-GST融合蛋白诱导和纯化 | 第109-111页 |
| 4.2.2 IL-1β-GST融合蛋白诱导和纯化 | 第111-113页 |
| 4.2.3 IL-21-HIS融合蛋白诱导和纯化 | 第113-114页 |
| 4.3 讨论 | 第114-116页 |
| 4.3.1 MyD88原核表达和功能研究 | 第114-115页 |
| 4.3.2 IL-1β基因的原核表达和纯化 | 第115页 |
| 4.3.3 IL-21基因的原核表达和纯化 | 第115-116页 |
| 第5章 结论 | 第116-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-129页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第129页 |
