| 英汉缩略语对照表 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-27页 |
| 1.1 金属有机框架的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.1.1 金属有机框架(MOFs)的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.1.2 金属有机框架(MOFs)的特点及合成 | 第16-17页 |
| 1.1.2.1 特点 | 第16页 |
| 1.1.2.2 合成 | 第16-17页 |
| 1.1.3 纳米金属有机框架(NMOFs)作为药物输送载体的应用前景 | 第17-18页 |
| 1.2 抗肿瘤药物的靶向性研究进展 | 第18-21页 |
| 1.2.1 肿瘤的靶向治疗现状 | 第18-19页 |
| 1.2.2 肿瘤的靶向治疗分类 | 第19-21页 |
| 1.2.2.1 被动靶向 | 第19页 |
| 1.2.2.2 主动靶向 | 第19-21页 |
| 1.3 RGD肽作为靶向配体在纳米递药系统的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 RGD肽与整合素家族的概述 | 第22页 |
| 1.3.2 RGD肽在肿瘤治疗中的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.3.2.1 RGD肽的肿瘤显像治疗 | 第22页 |
| 1.3.2.2 RGD肽的基因靶向治疗 | 第22-23页 |
| 1.3.2.3 RGD肽对肿瘤的抑制作用 | 第23页 |
| 1.3.2.4 RGD肽在纳米给药系统中的应用 | 第23-24页 |
| 1.4 模型药物的选择 | 第24-26页 |
| 1.4.1 结构和理化性质 | 第24-25页 |
| 1.4.2 副作用及临床应用 | 第25页 |
| 1.4.3 抗肺癌作用机制 | 第25-26页 |
| 1.5 立题依据及创新点 | 第26-27页 |
| 第2章 纳米金属有机框架IRMOF-3的制备及其表征 | 第27-33页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第27页 |
| 2.1.1 仪器 | 第27页 |
| 2.1.2 试剂 | 第27页 |
| 2.2 实验方法与结果 | 第27-32页 |
| 2.2.1 IRMOF-3的最佳制备工艺 | 第27-28页 |
| 2.2.2 IRMOF-3的表征 | 第28-32页 |
| 2.2.2.1 IRMOF-3的SEM分析 | 第28页 |
| 2.2.2.2 IRMOF-3的IR分析 | 第28-29页 |
| 2.2.2.3 IRMOF-3的XRD分析 | 第29-31页 |
| 2.2.2.4 IRMOF-3的氮气吸附分析 | 第31-32页 |
| 2.3 小结 | 第32-33页 |
| 第3章 RGD-IRMOF-3的制备及表征 | 第33-42页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 仪器 | 第33页 |
| 3.1.2 材料 | 第33-34页 |
| 3.2 原理与方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 原理 | 第34页 |
| 3.2.2 实验方法探索 | 第34-35页 |
| 3.2.2.1 碳二亚胺法 | 第35页 |
| 3.2.2.2 吡啶催化法 | 第35页 |
| 3.2.2.3 酰氯法 | 第35页 |
| 3.2.3 结果与讨沦 | 第35-37页 |
| 3.3 RGD-IRMOF-3的表征及讨论 | 第37-41页 |
| 3.3.1 ROD-IRMOF-3的电镜扫描分析 | 第37-38页 |
| 3.3.2 RGD-IRMOF-3的红外图谱分析 | 第38-40页 |
| 3.3.3 RGD-IRMOF-3的质谱分析 | 第40-41页 |
| 3.3.4 RGD-IRMOF-3的元索分析 | 第41页 |
| 3.4 小结 | 第41-42页 |
| 第4章 纳米金属有机框架的冻干工艺研究 | 第42-48页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第42页 |
| 4.1.1 仪器 | 第42页 |
| 4.1.2 试药 | 第42页 |
| 4.2 方法与结果 | 第42-46页 |
| 4.2.1 冻干保护剂的选择 | 第42-45页 |
| 4.2.1.1 不加稳定剂的冻干剂处方及结果 | 第43-44页 |
| 4.2.1.2 加入稳定剂的冻干剂处方及结果 | 第44-45页 |
| 4.2.2 初步优选处方冻干对粒径的影响 | 第45-46页 |
| 4.3 冻干工艺的建立 | 第46-47页 |
| 4.3.1 冻干曲线 | 第46-47页 |
| 4.3.2 冻干前后形态的变化 | 第47页 |
| 4.4 结论 | 第47-48页 |
| 第5章 载药纳米金属有机框架溶血性实验研究 | 第48-53页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第48页 |
| 5.1.1 仪器 | 第48页 |
| 5.1.2 材料 | 第48页 |
| 5.2 方法与结果 | 第48-52页 |
| 5.2.1 2%红细胞悬液的制备 | 第48-49页 |
| 5.2.2 溶血实验 | 第49-50页 |
| 5.2.3 溶血实验结果 | 第50-52页 |
| 5.3 小结 | 第52-53页 |
| 第6章 载药纳米金属有机框架在小鼠体内的组织分布研究 | 第53-73页 |
| 6.1 纳米金属有机框架载斑蝥素的最优工艺 | 第53页 |
| 6.2 生物样品中斑蝥素分析方法的建立 | 第53-65页 |
| 6.2.1 材料与动物 | 第53-54页 |
| 6.2.1.1 仪器与试剂 | 第53页 |
| 6.2.1.2 实验动物 | 第53-54页 |
| 6.2.2 方法与结果 | 第54-65页 |
| 6.2.2.1 色谱条件 | 第54页 |
| 6.2.2.2 空白组织样品处理方法 | 第54页 |
| 6.2.2.3 专属性考察 | 第54-61页 |
| 6.2.2.4 线性回归方程 | 第61-62页 |
| 6.2.2.5 精密度试验 | 第62-63页 |
| 6.2.2.6 提取回收率试验 | 第63-64页 |
| 6.2.2.7 方法回收率试验 | 第64-65页 |
| 6.2.3 讨论与小结 | 第65页 |
| 6.3 小鼠体内分布研究 | 第65-73页 |
| 6.3.1 材料与动物 | 第66页 |
| 6.3.2 实验方法 | 第66页 |
| 6.3.3 实验结果 | 第66-72页 |
| 6.3.3.1 各组织中的药物实测浓度 | 第66-70页 |
| 6.3.3.2 靶向性评价 | 第70-72页 |
| 6.3.4 讨论与小结 | 第72-73页 |
| 第7章 基于荧光内窥视激光共聚焦成像系统IRMOF-3和RGD-IRMOF-3的研究 | 第73-81页 |
| 7.1 荧光内窥视激光共聚焦成像系统简介 | 第73-74页 |
| 7.2 荧光内窥视激光共聚焦成像原理 | 第74页 |
| 7.3 材料与动物 | 第74-75页 |
| 7.3.1 仪器与试剂 | 第74-75页 |
| 7.3.2 实验动物 | 第75页 |
| 7.4 实验方法 | 第75-76页 |
| 7.4.1 FITC标记的纳米金属有机框架FITC-IRMOF-3的制备 | 第75页 |
| 7.4.2 实验操作过程 | 第75-76页 |
| 7.4.2.1 实验动物分组 | 第75-76页 |
| 7.4.2.2 给药方式 | 第76页 |
| 7.4.2.3 实验过程 | 第76页 |
| 7.5 实验结果 | 第76-80页 |
| 7.5.1 肺细胞观测 | 第76-77页 |
| 7.5.2 不同时间点各组织细胞观测 | 第77-80页 |
| 7.6 讨论与小结 | 第80-81页 |
| 全文结论 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-90页 |
| 个人简历和创新点说明 | 第90页 |
