| 致谢 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-16页 |
| 缩略语表 | 第19-25页 |
| 前言 | 第25-30页 |
| 第一部分 ALK抑制肠癌细胞增殖、阻滞细胞周期及诱导基因表达谱分析 | 第30-64页 |
| 1. 前言 | 第30-31页 |
| 2. 材料和方法 | 第31-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-37页 |
| 2.3 统计方法 | 第37页 |
| 3. 实验结果 | 第37-59页 |
| 3.1 ALK抑制肠癌细胞集落生成的作用 | 第37-40页 |
| 3.2 ALK作用后肠癌细胞集落生长的形态 | 第40-42页 |
| 3.3 ALK对肠癌细胞跨膜蛋白表达荧光强度的影响 | 第42-46页 |
| 3.4 MTT检测ALK抑制肠癌细胞增殖的作用 | 第46-49页 |
| 3.5 ALK阻滞肠癌细胞进入增殖周期 | 第49-52页 |
| 3.6 ALK诱导肠癌细胞的基因表达谱 | 第52-55页 |
| 3.7 检测ALK上调的p53基因及其蛋白表达,验证芯片结果 | 第55-57页 |
| 3.8 ALK对HT29细胞其它肠癌相关蛋白表达的影响 | 第57-59页 |
| 4. 分析与讨论 | 第59-62页 |
| 5. 小结 | 第62-64页 |
| 第二部分 ALK抑制荷肠癌裸鼠体内瘤体的生长及调控相关癌基因的表达 | 第64-86页 |
| 1. 前言 | 第64页 |
| 2. 材料和方法 | 第64-68页 |
| 2.1 药物与试剂 | 第64-65页 |
| 2.2 实验动物 | 第65页 |
| 2.3 人肠癌细胞 | 第65页 |
| 2.4 采用人肠癌HT29-GFP细胞制备皮下移植瘤裸鼠模型 | 第65-66页 |
| 2.5 动物分组及给药 | 第66页 |
| 2.6 动物处理与样本采集 | 第66页 |
| 2.7 瘤组织病理检查 | 第66页 |
| 2.8 免疫组化法检测瘤组织肿瘤相关蛋白的表达 | 第66-67页 |
| 2.9 实时荧光定量RT-PCR检测肿瘤相关基因mRNA表达变化 | 第67-68页 |
| 2.10 Western blot检测肿瘤相关基因产物蛋白的表达 | 第68页 |
| 2.11 统计分析 | 第68页 |
| 3. 实验结果 | 第68-81页 |
| 3.1 ALK改善化疗裸鼠模型的一般情况 | 第68-69页 |
| 3.2 治疗后荷瘤裸鼠瘤重与体重的比值 | 第69-70页 |
| 3.3 ALK治疗后荷瘤裸鼠移植瘤体积的变化 | 第70-71页 |
| 3.4 ALK治疗后荷瘤裸鼠瘤体荧光信号值的变化 | 第71-73页 |
| 3.5 ALK治疗后皮下移植瘤组织的病理变化 | 第73页 |
| 3.6 ALK对移植瘤组织肿瘤相关蛋白表达的影响 | 第73-76页 |
| 3.7 ALK对瘤组织肿瘤相关基因mRNA表达的影响 | 第76-80页 |
| 3.8 ALK治疗后肿瘤相关蛋白表达的变化 | 第80-81页 |
| 4. 分析和讨论 | 第81-85页 |
| 5. 小结 | 第85-86页 |
| 第三部分 ALK诱导小鼠骨髓来源树突状细胞分化成熟及功能激活 | 第86-96页 |
| 1. 前言 | 第86页 |
| 2. 实验材料和方法 | 第86-89页 |
| 2.1 研究用药 | 第86-87页 |
| 2.2 实验细胞和试剂 | 第87页 |
| 2.3 实验动物 | 第87页 |
| 2.4 小鼠骨髓来源树突状细胞的培养并鉴定 | 第87页 |
| 2.5 小鼠BMDC的体外诱导和培养 | 第87-88页 |
| 2.6 流式细胞术鉴定DC表面标志 | 第88页 |
| 2.7 制备肠癌荷瘤裸鼠模型 | 第88页 |
| 2.8 荷肠癌裸鼠模型分组及给药 | 第88-89页 |
| 2.9 统计方法 | 第89页 |
| 3. 实验结果 | 第89-93页 |
| 3.1 ALK促进BMDC分化、成熟的形态学改变 | 第89页 |
| 3.2 ALK对BMDC表面标志物表达的影响 | 第89-91页 |
| 3.3 ALK对HT29-GFP荷瘤裸鼠皮下瘤组织DC漫润的影响 | 第91-93页 |
| 4. 分析和讨论 | 第93-95页 |
| 5. 小结 | 第95-96页 |
| 全文总结 | 第96-99页 |
| 参考文献 | 第99-104页 |
| 综述 | 第104-122页 |
| 参考文献 | 第117-122页 |
| 作者简历 | 第122-123页 |
