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BRD7参与小鼠炎症发生的功能及机制研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
目录第10-12页
主要缩写词简表第12-13页
第一章 前言第13-17页
第二章 材料与方法第17-30页
    2.1 材料第17-21页
        2.1.1 所用细胞第17页
        2.1.2 实验动物第17页
        2.1.3 主要试剂第17-18页
        2.1.4 主要溶液配制第18-19页
        2.1.5 主要仪器第19-20页
        2.1.6 引物第20-21页
    2.2 实验方法第21-29页
        2.2.1 小鼠基因型鉴定第21-22页
        2.2.2 小鼠组织蛋白水平鉴定第22-23页
        2.2.3 制备小鼠胚胎成纤维细胞第23页
        2.2.4 实时定量PCR检测LPS诱导MEF细胞后炎症因子的表达第23-25页
        2.2.5 小鼠溃疡性结肠炎模型的建立第25-26页
        2.2.6 标本采集第26页
        2.2.7 结直肠组织病理学检测第26-27页
        2.2.8 免疫组织化学第27-28页
        2.2.9 免疫荧光第28-29页
    2.3 数据处理及统计学分析第29-30页
第三章 结果第30-45页
    3.1 实验小鼠鼠尾基因型鉴定及部分组织BRD7蛋白水平的检测第30-31页
    3.2 BRD7缺失容易导致小鼠体表炎症及脾脏形态结构的异常第31-33页
        3.2.1 BRD7缺失容易导致小鼠体表炎症第31-32页
        3.2.2 BRD7缺失易导致免疫器官脾形态和结构的异常第32-33页
    3.3 脾脏全基因组芯片杂交及芯片验证第33-36页
        3.3.1 脾脏RNA的抽提及BRD7的表达鉴定第33页
        3.3.2 脾脏全基因组芯片杂交,构建差异基因表达谱第33-35页
        3.3.3 芯片验证第35-36页
    3.4 构建LPS诱导的小鼠胚胎成纤维细胞炎症模型第36-39页
        3.4.1 MEF细胞的制备第37页
        3.4.2 real-time PCR检测LPS诱导MEF细胞后炎症因子mRNA水平的表达第37-39页
    3.5 构建AOM/DSS联合诱导的小鼠溃疡性结肠炎动物模型第39-42页
        3.5.1 建模动物的一般状况观察第39-40页
        3.5.2 病理组织学改变及病例检测第40-42页
    3.6 免疫组织化学及免疫荧光实验证实BRD7通过IL-6、TNFA、CXCL1、INOS介导的NF-κB信号通路参与了炎症的发生第42-45页
        3.6.1 免疫组织化学结果第42-44页
        3.6.2 免疫荧光结果第44-45页
第四章 讨论第45-51页
    4.1 基因敲除小鼠模型是研究BRD7在体内的新表型、生物学功能和机制的良好模型第45-46页
    4.2 炎症模型的构建第46-48页
        4.2.1 LPS诱导的小鼠胚胎成纤维细胞炎症模型第46-47页
        4.2.2 AOM/DSS联合诱导的小鼠溃疡性结肠炎模型第47-48页
    4.3 BRD7参与小鼠炎症发生的机制第48-51页
第五章 结论第51-52页
参考文献第52-57页
综述第57-71页
    参考文献第66-71页
攻读硕士学位期间主要研究成果第71-72页
致谢第72-73页

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