致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9页 |
目次 | 第10-12页 |
1 绪论 | 第12-19页 |
1.1 叶际微生物 | 第12-13页 |
1.2 气孔免疫 | 第13-14页 |
1.3 气孔免疫的诱发机制 | 第14-16页 |
1.4 致病菌抑制气孔免疫现象的机理 | 第16页 |
1.5 β-氨基丁酸对气孔免疫的作用 | 第16-17页 |
1.6 本文的立题依据 | 第17-19页 |
2 材料与方法 | 第19-28页 |
2.1 实验技术路线与选用材料 | 第19-20页 |
2.1.1 实验技术路线 | 第19页 |
2.1.2 实验材料的选用 | 第19-20页 |
2.2 实验方法 | 第20-28页 |
2.2.1 蚕豆材料的培养方法 | 第20页 |
2.2.2 水稻材料的培养方法 | 第20-21页 |
2.2.3 植物材料的培养方法 | 第21-22页 |
2.2.4 酿酒酵母的培养 | 第22-23页 |
2.2.5 β-氨基丁酸的配制 | 第23页 |
2.2.6 测量经不同酵母浓度处理后蚕豆表皮条的气孔开度 | 第23页 |
2.2.7 测量经酵母与BABA混合液处理后表皮条的气孔开度 | 第23页 |
2.2.8 测量经不同试剂处理后拟南芥表皮条的气孔开度 | 第23-24页 |
2.2.9 测量关于酵母诱发蚕豆叶片气孔免疫现象的气体交换实验 | 第24页 |
2.2.10 测量关于不同处理诱发蚕豆叶片气孔免疫现象的气体交换实验 | 第24-25页 |
2.2.11 水稻叶片的气体交换实验 | 第25页 |
2.2.12 水稻干旱处理 | 第25页 |
2.2.13 叶绿素提取实验 | 第25-26页 |
2.2.14 水稻生物量的测量实验 | 第26页 |
2.2.15 蚕豆叶片保卫细胞内过氧化氢含量的荧光测定 | 第26页 |
2.2.16 利用叶绿素荧光成像技术测定蚕豆叶片在接种酵母以及两者混合液后光系统的变化情况 | 第26-28页 |
3 结果与分析 | 第28-39页 |
3.1 BABA与酵母混合剂对蚕豆叶片气孔免疫的作用 | 第28-32页 |
3.1.1 酿酒酵母诱导气孔免疫现象的发生 | 第28-29页 |
3.1.2 蚕豆叶片经酵母处理后气体导度的测定结果 | 第29-30页 |
3.1.3 β-氨基丁酸加强酵母诱导气孔免疫的现象的发生 | 第30-31页 |
3.1.4 不同溶液对蚕豆叶片气孔交换参数的影响 | 第31-32页 |
3.2 BABA与酵母混合剂对水稻叶片气孔免疫的作用 | 第32-35页 |
3.2.1 对干旱处理的水稻进行不同处理后的气体交换参数变化 | 第32-33页 |
3.2.2 不同处理下水稻叶片内叶绿素含量的变化 | 第33-34页 |
3.2.3 不同处理对水稻生物量的影响 | 第34-35页 |
3.3 BABA影响酵母诱发气孔免疫的作用机理 | 第35-39页 |
3.3.1 BABA提高酵母诱导保卫细胞内过氧化氢的含量 | 第35-36页 |
3.3.2 BABA加强酵母诱导叶片内叶绿素荧光的反应 | 第36-37页 |
3.3.3 BABA和酵母诱导拟南芥气孔免疫的机理 | 第37-39页 |
4 讨论 | 第39-44页 |
4.1 BABA与酵母混合剂对蚕豆叶片气孔免疫的作用 | 第39-40页 |
4.2 BABA与酵母混合剂对水稻叶片气孔免疫的作用 | 第40页 |
4.3 BABA影响酵母诱发气孔免疫的作用机理 | 第40-44页 |
参考文献 | 第44-52页 |
附录 | 第52页 |
作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第52页 |