| 英文缩略词 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1 鱼类的性别决定和性别分化概述 | 第13页 |
| 2 鱼类生殖细胞的发育 | 第13-15页 |
| 2.1 鱼类PGCs | 第14页 |
| 2.2 鱼类PGCs在性别分化过程中作用 | 第14-15页 |
| 3 生殖细胞分子标记概述 | 第15-16页 |
| 4 生殖细胞减数分裂的调控机制概述 | 第16-18页 |
| 4.1 RA起始减数分裂的研究进展 | 第16-18页 |
| 4.2 RA合成酶——Aldh1a家族 | 第18页 |
| 5 科学问题的提出和本研究的目的意义 | 第18-21页 |
| 第2章 dnd在尼罗罗非鱼生殖细胞发育中的功能研究 | 第21-43页 |
| 1 引言 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-33页 |
| 2.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 试剂、耗材和仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 有关试剂的配制 | 第23-25页 |
| 2.4 氨基酸序列比对分析 | 第25-26页 |
| 2.5 罗非鱼dnd性腺转录组分析 | 第26页 |
| 2.6 罗非鱼dnd组织表达模式分析 | 第26-28页 |
| 2.7 罗非鱼dnd CRISPR/Cas9敲除 | 第28-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-40页 |
| 3.1 dnd氨基酸同源性分析 | 第33-34页 |
| 3.2 罗非鱼dnd性腺转录组分析 | 第34-35页 |
| 3.3 dnd在罗非鱼成鱼不同组织表达模式分析 | 第35页 |
| 3.4 罗非鱼dnd CRISPR/Cas9敲除靶位点的选择及突变检测 | 第35-37页 |
| 3.5 dnd敲除影响性腺生殖细胞的正常发育 | 第37-38页 |
| 3.6 dnd敲除鱼的免疫组织化学分析 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-43页 |
| 第3章 RA合成酶aldh1a2在尼罗罗非鱼生殖细胞发育中的调控研究 | 第43-51页 |
| 1 引言 | 第43-44页 |
| 2 材料与方法 | 第44页 |
| 2.1 材料 | 第44页 |
| 2.2 药物处理 | 第44页 |
| 2.3 罗非鱼aldh1a2多克隆抗体免疫组织化学检测 | 第44页 |
| 2.4 DEAB处理鱼的取材及组织学和免疫组织化学检测 | 第44页 |
| 2.5 罗非鱼aldh1a2 CRISPR/Cas9敲除 | 第44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-49页 |
| 3.1 罗非鱼aldh1a2在XX和XY性腺发育过程中表达 | 第44-45页 |
| 3.2 罗非鱼aldh1a2 CRISPR/Cas9敲除靶位点的选择及突变检测 | 第45-47页 |
| 3.3 DEAB处理鱼和aldh1a2敲除鱼卵巢发育组织学观察 | 第47-48页 |
| 3.4 生殖细胞缺失时Aldh1a2表达情况 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 在读期间发表论文情况 | 第61页 |
| 在读期间参加科研情况 | 第61页 |
