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石杉碱生物合成与代谢调控途径的研究

中文摘要第10-12页
Abstract第12-13页
第一章 综述石杉碱生物合成与代谢途径研究进展第14-18页
    引言第14页
    1.1 石杉碱甲生源关系及其分子结构第14-15页
    1.2 课题研究背景第15-16页
    1.3 石杉碱甲的生物合成与代谢调控的关键限速酶(基因)的选择第16-17页
        1.3.1 赖氨酸脱羧酶简介第16页
        1.3.2 细胞色素P450(CYP450)简介第16页
        1.3.3 甲基转移酶(MTs)简介第16-17页
        1.3.4 加双氧酶简介第17页
    1.4 课题的任务第17-18页
第二章 四种石杉科植物L-赖氨酸脱羧酶基因的克隆及分析第18-42页
    引言第18页
    2.1 试验材料第18-22页
        2.1.1 植物材料第18页
        2.1.2 菌株第18-19页
        2.1.3 仪器及设备第19-20页
        2.1.4 购买试剂第20-21页
        2.1.5 自配标准试剂第21-22页
    2.2 试验方法和步骤第22-36页
        2.2.1 四种石杉科植物总RNA的提取第22-24页
            2.2.1.1 提取RNA的准备工作第22页
            2.2.1.2 提取RNA步骤第22-24页
            2.2.1.3 提取RNA浓度及纯度的测定第24页
        2.2.2 四种石杉科植物总RNA的反转录成cDNA第24-25页
        2.2.3 四种石杉科植物L-lysine decarboxy lase基因扩增第25-30页
            2.2.3.1 L-lysine decarboxy lase基因扩增体系反应物水平正交优化第25-27页
            2.2.3.2 反应退火温度的优化第27-29页
            2.2.3.3 反应程序循环数的优化第29页
            2.2.3.4 优化体系及退火温度后四种石杉科植物L-赖氨酸脱羧酶基因的扩增第29-30页
        2.2.4 割胶纯化回收目的DNA片段操作步骤第30-31页
        2.2.5 PCR产物与载体的连接第31-32页
        2.2.6 感受态细胞的制备第32-33页
        2.2.7 连接反应产物的转化第33-34页
        2.2.8 筛选及验证含插入片段的转化子第34-36页
            2.2.8.1 包含插入片段质粒的提取第34-35页
            2.2.8.2 含插入基因质粒的验证第35-36页
    2.3 结果与讨论第36-40页
        2.3.1 对扩增L-赖氨酸脱羧酶基因优化结果的讨论第36-37页
            2.3.1.1 对扩增L-赖氨酸脱羧酶基因反应物正交优化结果的讨论第36页
            2.3.1.2 对扩增L-赖氨酸脱羧酶基因程序退火温度优化结果的讨论第36-37页
            2.3.1.3 对扩增L-赖氨酸脱羧酶基因程序反应循环数优化结果的讨论第37页
        2.3.2 对感受态细胞制备实验的讨论第37页
        2.3.3 各材料赖氨酸脱羧酶基因核酸序列的Blast比对结果及系统发生构建第37-38页
            2.3.3.1 各材料L-赖氨酸脱羧酶的nucleotide blast下的blastn比对第37页
            2.3.3.2 各材料赖氨酸脱羧酶基因核酸序列系统发生树分析第37-38页
        2.3.4 各材料赖氨酸脱羧酶基因氨基酸序列Blastx比对结果及系统发生构建第38-40页
            2.3.4.1 各材料L-赖氨酸脱羧酶的nucleotide blast下的blastx比对第38-40页
    2.4 小结与讨论第40-42页
第三章 四种石杉科植物细胞色素P450基因的克隆及分析第42-59页
    引言第42页
    3.1 试验材料第42-43页
        3.1.1 植物材料第42页
        3.1.2 菌株第42页
        3.1.3 仪器及设备第42页
        3.1.4 购买试剂第42页
        3.1.5 自配标准试剂第42-43页
    3.2 试验方法和步骤第43-55页
        3.2.1 四种石杉科植物总RNA的提取第43页
        3.2.2 四种石杉科植物总RNA反转录成cDNA第43页
        3.2.3 四种石杉科植物细胞色素71A_1基因的扩增第43-44页
        3.2.4 四种石杉科植物细胞色素72A_1基因的扩增第44页
        3.2.5 四种石杉科植物细胞色素90A基因的扩增第44-48页
        3.2.6 细胞色素Cyp450-71A_1基因扩增反应体系退火温度的优化第48-49页
        3.2.7 细胞色素Cyp450-71A_1基因优化反应体系扩增第49-50页
        3.2.8 细胞色素Cyp450-72A_1基因扩增反应体系退火温度的优化第50-51页
        3.2.9 细胞色素Cyp450-72A_1基因优化反应体系扩增第51页
        3.2.10 细胞色素Cyp450-90A基因扩增反应体系退火温度的优化第51-52页
        3.2.11 细胞色素Cyp450-90A基因优化反应体系扩增第52-53页
        3.2.12 目的DNA片段的割胶纯化回收第53页
        3.2.13 目的片段与载体的连接第53页
        3.2.14 感受态细胞的制备第53页
        3.2.15 连接反应产物的转化第53-54页
        3.2.16 筛选及验证含插入片段的转化子第54-55页
            3.2.16.1 包含插入片段质粒的提取第54页
            3.2.16.2 含插入基因质粒的验证第54-55页
    3.3 结果与讨论第55-58页
        3.3.1 各材料细胞色素P450基因核酸序列的Blast比对结果及系统发生构建第55-56页
            3.3.1.1 各材料细胞色素P450基因的nucleotide blast下的blastn比对第55页
            3.3.1.2 各材料细胞色素P450基因基因核酸序列系统发生树分析第55-56页
        3.3.2 各材料细胞色素P450氨基酸序列的Blast比对结果及系统发生构建第56-58页
            3.3.2.1 各材料细胞色素P450-71A1的blastx比对及系统发生构建第56-57页
            3.3.2.2 各材料细胞色素P450-72A1的blastx比对及系统发生构建第57页
            3.3.2.3 各材料细胞色素P450-90A的blastx比对及系统发生构建第57-58页
    3.4 小结与讨论第58-59页
第四章 四种石杉科植物加双氧酶基因的克隆及分析第59-66页
    引言第59页
    4.1 试验材料第59-60页
        4.1.1 植物材料第59页
        4.1.2 菌株第59页
        4.1.3 仪器及设备第59页
        4.1.4 购买试剂第59页
        4.1.5 自配标准试剂第59-60页
    4.2 试验方法和步骤第60-65页
        4.2.1 四种石杉科植物总RNA的提取第60页
        4.2.2 四种石杉科植物总RNA的反转录成cDNA第60页
        4.2.3 加双氧酶基因的扩增正交优化第60-62页
        4.2.4 加双氧酶基因扩增反应体系退火温度的优化第62-63页
        4.2.5 加双氧酶基因优化反应体系扩增第63-64页
        4.2.6 目的DNA片段的割胶纯化回收第64页
        4.2.7 目的片段与载体的连接第64页
        4.2.8 感受态细胞的制备第64页
        4.2.9 连接反应产物的转化第64页
        4.2.10 筛选及验证含插入片段的转化子第64-65页
            4.2.10.1 包含插入片段质粒的提取第64页
            4.2.10.2 含插入基因质粒的验证第64-65页
    4.3 结果与讨论第65-66页
        4.3.1 各材料加双氧酶序列的Blast比对及系统发生的构建第65页
        4.3.2 对加双氧酶序列的比对结果的讨论第65-66页
第五章 四种石杉科植物甲基转移酶基因的克隆及分析第66-74页
    引言第66页
    5.1 试验材料第66-67页
        5.1.1 植物材料第66页
        5.1.2 菌株第66页
        5.1.3 仪器及设备第66页
        5.1.4 购买试剂第66页
        5.1.5 自配标准试剂第66-67页
    5.2 试验方法和步骤第67-72页
        5.2.1 四种石杉科植物总RNA的提取第67页
        5.2.2 四种石杉科植物总RNA的反转录成cDNA第67页
        5.2.3 四种石杉科植物甲基转移酶基因的扩增第67-69页
        5.2.4 甲基转移酶基因扩增反应体系退火温度的优化第69-70页
        5.2.5 甲基转移酶基因优化反应体系扩增第70-71页
        5.2.6 目的DNA片段的割胶纯化回收第71页
        5.2.7 目的片段与载体的连接第71页
        5.2.8 感受态细胞的制备第71页
        5.2.9 连接反应产物的转化第71页
        5.2.10 筛选及验证含插入片段的转化子第71-72页
            5.2.10.1 包含插入片段质粒的提取第71页
            5.2.10.2 含插入基因质粒的验证第71-72页
    5.3 结果与讨论第72-73页
        5.3.1 对扩增甲基转移酶基因优化结果的讨论第72页
        5.3.2 各材料甲基转移酶基因序列的Blast比对结果及系统发生构建第72-73页
            5.3.2.1 各材料甲基转移酶基因的nucleotide blast下的blastn比对第72页
            5.3.2.2 各材料甲基转移酶的blastx比对第72-73页
    5.4 小结与讨论第73-74页
第六章 华南马尾杉及有柄马尾杉石杉碱生物合成途径中关键酶基因的荧光定量分析第74-82页
    引言第74页
    6.1 试验材料第74-75页
        6.1.1 植物材料第74页
        6.1.2 仪器设备及耗材第74页
        6.1.3 购买试剂第74-75页
        6.1.4 自配标准试剂第75页
    6.2 试验方法和步骤第75-78页
        6.2.1 华南马尾杉与有柄马尾杉总RNA的提取第75页
            6.2.1.1 提取RNA的准备工作第75页
            6.2.1.2 提取RNA步骤第75页
            6.2.1.3 提取RNA浓度及纯度的测定第75页
        6.2.2 华南马尾杉与有柄马尾杉总RNA的反转录成cDNA第75页
        6.2.3 荧光定量PCR引物设计第75-77页
            6.2.3.1 关键酶基因引物设计原则第75-76页
            6.2.3.2 内参基因引物的设计第76页
            6.2.3.3 关键酶基因引物的设计第76-77页
        6.2.4 华南马尾杉与有柄马尾杉关键酶基因的荧光定量分析第77-78页
    6.3 结果与讨论第78-81页
        6.3.1 荧光定量PCR结果分析第78-79页
            6.3.1.1 L-赖氨酸脱羧酶基因荧光定量PCR结果分析第78页
            6.3.1.2 Cytochrome P450 71A1基因荧光定量PCR结果分析第78页
            6.3.1.3 Cytochrome P450 72A1基因荧光定量PCR结果分析第78页
            6.3.1.4 加双氧酶基因荧光定量PCR结果分析第78页
            6.3.1.5 甲基转移酶基因荧光定量PCR结果分析第78-79页
        6.3.2 荧光定量PCR结果数值计算及分析第79-81页
    6.4 小结与讨论第81-82页
第七章 长柄石杉LDB基因全长的调取第82-91页
    引言第82页
    7.1 试验材料第82页
        7.1.1 植物材料第82页
        7.1.2 菌株第82页
        7.1.3 仪器设备及耗材第82页
        7.1.4 购买试剂第82页
        7.1.5 自配标准试剂第82页
    7.2 试验方法和步骤第82-86页
        7.2.1 引物合成第82-83页
        7.2.2 L-赖氨酸脱羧酶基因5’race第83-85页
            7.2.2.1 总RNA提取第83页
            7.2.2.2 cDNA第一条链的合成第83页
            7.2.2.3 TDT加尾反应第83-84页
            7.2.2.4 巢式PCR反应第84-85页
        7.2.3 L-赖氨酸脱羧酶基因3’race第85-86页
            7.2.3.1 总RNA提取第85页
            7.2.3.2 cDNA第一条链的合成第85页
            7.2.3.3 巢式PCR反应第85-86页
    7.3 结果与讨论第86-91页
        7.3.1 长柄石杉LDB基因序列全长第86-87页
        7.3.2 长柄石杉LDB氨基酸序列全长第87页
        7.3.3 二级结构分析第87-88页
        7.3.4 三级结构分析第88-91页
            7.3.4.1 从63至242位氨基酸评价结果第88页
            7.3.4.2 从29至240位氨基酸评价结果第88-91页
第八章 结论与展望第91-94页
    引言第91页
    8.1 石杉碱甲的生物合成及代谢调控可能途径描述第91-92页
    8.2 展望第92-93页
    8.3 本文创新点第93页
    8.4 需继续深入研究的课题项目第93页
    8.5 研究生期间参与的基金研究项目及发表的论文第93-94页
参考文献第94-99页
附录第99-104页
致谢第104页

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