| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1 蔗糖转化酶在高等植物中的研究进展 | 第11-17页 |
| 1.1 蔗糖转化酶的分类及其特性 | 第11-12页 |
| 1.2 蔗糖转化酶在高等植物中的功能 | 第12-15页 |
| 1.3 蔗糖转化酶的分子结构特点 | 第15-16页 |
| 1.4 植物蔗糖转化酶的调控 | 第16-17页 |
| 2 蔗糖转化酶抑制蛋白 | 第17-20页 |
| 2.1 蔗糖转化酶抑制蛋白的发现 | 第17页 |
| 2.2 蔗糖转化酶抑制蛋白的作用机制 | 第17-18页 |
| 2.3 蔗糖转化酶抑制蛋白的分子结构特点 | 第18-19页 |
| 2.4 植物蔗糖转化酶抑制蛋白的调控 | 第19页 |
| 2.5 植物蔗糖转化酶抑制蛋白在高等植物中的功能研究 | 第19-20页 |
| 3. 番茄细胞壁蔗糖转化酶及番茄细胞壁蔗糖转化酶抑制蛋白 | 第20-21页 |
| 第二章 番茄Le-INVINH1过量表达植株的获取 | 第21-38页 |
| 1 前言 | 第21-22页 |
| 2 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1 菌株和酶 | 第22页 |
| 2.2 实验中用到的试剂及培养基 | 第22-24页 |
| 2.3 植物材料 | 第24页 |
| 3 实验方法 | 第24-29页 |
| 3.1 载体p1300RG的构建 | 第24-25页 |
| 3.2 载体p1300RI的构建 | 第25页 |
| 3.3 农杆菌LBA4404感受态细胞的制备 | 第25-26页 |
| 3.4 农杆菌介导的组织培养法转化番茄 | 第26-27页 |
| 3.5 番茄基因组DNA的提取 | 第27页 |
| 3.6 转基因苗PCR检测 | 第27-28页 |
| 3.7 GUS活性的组织化学染色 | 第28页 |
| 3.8 INVINH1表达量检测 | 第28-29页 |
| 4 实验结果 | 第29-38页 |
| 4.1 载体p1300RG的构建图谱 | 第30-32页 |
| 4.2 转载体p1300RG植株的PCR鉴定 | 第32-33页 |
| 4.3 番茄启动子rbcS3A引导的Gus基因在番茄中的表达模式 | 第33-34页 |
| 4.4 载体p1300RI的构建图谱 | 第34-35页 |
| 4.5 转载体p1300RG植株的分子鉴定 | 第35-38页 |
| 第三章 转基因植株表型分析 | 第38-44页 |
| 1 前言 | 第38页 |
| 2 实验材料 | 第38-39页 |
| 2.1 植物材料 | 第38页 |
| 2.2 培养条件 | 第38-39页 |
| 3 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.1 Pro含量测定 | 第39-40页 |
| 3.2 POD的测定 | 第40页 |
| 4 实验结果 | 第40-44页 |
| 4.1 转基因植株在低温胁迫下的表型 | 第40-42页 |
| 4.2 转基因植株低温胁迫条件下的生理指标测定 | 第42-44页 |
| 第四章 低温耐受相关基因表达量分析 | 第44-52页 |
| 1 前言 | 第44页 |
| 2 实验材料 | 第44-45页 |
| 2.1 实验试剂 | 第44页 |
| 2.2 引物列表 | 第44-45页 |
| 3 实验方法 | 第45-46页 |
| 3.1 RT-PCR | 第45页 |
| 3.2 荧光定量PCR | 第45-46页 |
| 4 实验结果 | 第46-52页 |
| 4.1 番茄蔗糖转化酶基因表达量分析 | 第46-47页 |
| 4.2 番茄CBF基因表达量分析 | 第47页 |
| 4.3 番茄ABA合成以及信号通路相关基因表达量分析 | 第47-50页 |
| 4.4 外源性葡萄糖对转基因番茄水培扦插枝条低温耐受性的影响 | 第50-52页 |
| 第五章 讨论 | 第52-55页 |
| 1 细胞壁蔗糖转化酶抑制蛋白的表达水平影响植物对低温的耐受 | 第52页 |
| 2 低温胁迫条件下植物中INVINH1的表达影响了CBFs基因及ABA合成基因表达 | 第52-53页 |
| 3 蔗糖转化酶抑制蛋白通过调节葡萄糖含量影响植物对低温的耐受性 | 第53-54页 |
| 4 蔗糖转化酶抑制蛋白调控植物低温耐受性的模式图 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 附录 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
