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三种双酚类化学品对摇蚊的内分泌干扰效应影响研究

摘要第6-8页
ABSTRACT第8-10页
1. 绪论第11-26页
    1.1 双酚类化学品简介及研究现状第11-13页
    1.2 环境内分泌干扰物的筛查方法第13-16页
        1.2.1 环境内分泌干扰物筛查方法的国内外现状第13-14页
        1.2.2 筛选潜在内分泌干扰物的水生模式生物第14-16页
    1.3 摇蚊生态毒理学国内外研究现状第16-23页
        1.3.1 摇蚊的形态特征和生活习性第16-18页
        1.3.2 摇蚊的实验室繁育技术第18-19页
        1.3.3 个体水平毒性测试的应用第19-21页
        1.3.4 分子生物学领域的应用第21-23页
    1.4 研究意义第23-24页
    1.5 研究目的与内容第24-26页
        1.5.1 研究目的第24页
        1.5.2 研究内容第24-26页
2. 试验方法与材料第26-35页
    2.1 受试物第26页
    2.2 试验生物第26-27页
    2.3 实验仪器与材料第27-30页
    2.4 实验方法第30-34页
        2.4.1 温度、光照强度对摇蚊繁育的影响第30-31页
        2.4.2 急性毒性试验第31页
        2.4.3 摇蚊全生命周期实验第31-34页
        2.4.4 蛋白质含量测定第34页
        2.4.5 SOD与CAT酶活力测定第34页
    2.5 数据分析方法第34-35页
3. 结果与讨论第35-70页
    3.1 环境条件对摇蚊繁育的影响第35-42页
        3.1.1 温度、光照强度对摇蚊繁育的影响第35-40页
        3.1.2 讨论第40-42页
        3.1.3 小结第42页
    3.2 三种双酚类化学品对摇蚊的急性毒性第42-45页
        3.2.1 BPB对摇蚊的急性毒性第43页
        3.2.2 BPAP对摇蚊的急性毒性第43-44页
        3.2.3 BPP对摇蚊的急性毒性第44-45页
        3.2.4 小结第45页
    3.3 BPB和BPAP对摇蚊的全生命周期毒性-水体加标法第45-56页
        3.3.1 BPB水体加标法对摇蚊的全生命周期实验结果第46-50页
        3.3.2 BPAP水体加标法对摇蚊的全生命周期实验结果第50-54页
        3.3.3 讨论第54-55页
        3.3.4 小结第55-56页
    3.4 BPAP和BPP对摇蚊的全生命周期毒性-沉积物加标法第56-67页
        3.4.1 BPAP沉积物加标法对摇蚊的全生命周期毒性实验结果第56-59页
        3.4.2 BPP沉积物加标法对摇蚊的全生命周期毒性实验结果第59-63页
        3.4.3 不同暴露方式的毒性对比第63-64页
        3.4.4 讨论第64-66页
        3.4.5 小结第66-67页
    3.5 BPP对摇蚊抗氧化酶活性影响的实验结果第67-70页
        3.5.1 蛋白标准曲线第67页
        3.5.2 BPP对摇蚊CAT活性的影响第67-68页
        3.5.3 BPP对摇蚊SOD活性的影响第68页
        3.5.4 讨论第68-69页
        3.5.5 小结第69-70页
4. 结论与展望第70-73页
    4.1 结论第70-71页
    4.2 创新点第71页
    4.3 展望第71-73页
参考文献第73-78页
致谢第78-79页
作者简介第79-80页
硕士学位期间成果情况第80页

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