摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩写略表 | 第9-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-33页 |
1.1 减数分裂及其生物学意义 | 第11页 |
1.2. 减数分裂的过程 | 第11-15页 |
1.2.1 减数分裂的间期(pre-meiotic interphase) | 第11页 |
1.2.2 前期Ⅰ(prophase Ⅰ) | 第11-13页 |
1.2.3 中期Ⅰ(metaphase Ⅰ) | 第13页 |
1.2.4 后期Ⅰ(anaphase Ⅰ) | 第13页 |
1.2.5 末期Ⅰ(telophase Ⅰ) | 第13页 |
1.2.6 减数分裂Ⅱ | 第13-15页 |
1.3 减数分裂前期Ⅰ发生的重要生物学事件 | 第15页 |
1.4 同源重组机制 | 第15-17页 |
1.4.1 同源重组双链断裂修复模型 | 第16-17页 |
1.5 参与同源重组的蛋白 | 第17-25页 |
1.5.1 参与DSB形成的相关蛋白:SPO11及其辅助蛋白 | 第17-20页 |
1.5.2 参与DSB加工的蛋白:MRX复合体和COM1/SAE2/CtIP | 第20页 |
1.5.3 参与单链入侵和异源双链形成的蛋白:RAD51、DMC1及其辅助蛋白 | 第20-22页 |
1.5.4 参与交叉形成的蛋白 | 第22-25页 |
1.6 DSB双链断裂修复机制 | 第25-27页 |
1.7 联会复合体的形成 | 第27-29页 |
1.8 植物减数分裂的研究 | 第29-32页 |
1.9 论文研究意义和目标 | 第32-33页 |
1.9.1 研究意义 | 第32页 |
1.9.2 研究目标 | 第32-33页 |
第二章 材料与方法 | 第33-44页 |
2.1 实验材料 | 第33-34页 |
2.1.1 水稻材料 | 第33页 |
2.1.2 质粒及菌株 | 第33页 |
2.1.3 工具酶及各种生化试剂 | 第33页 |
2.1.4 本研究所用蛋白的序列号(accession number) | 第33-34页 |
2.2 实验方法 | 第34-44页 |
2.2.1 水稻总DNA的提取 | 第34页 |
2.2.2 分子标记的开发与基因的图位克隆 | 第34页 |
2.2.3 水稻总RNA的提取和cDNA反转录 | 第34-35页 |
2.2.4 半定量RT-PCR分析 | 第35-36页 |
2.2.5 质粒DNA小量提取 | 第36-37页 |
2.2.6 农杆菌电击感受态的制备 | 第37页 |
2.2.7 电击转化农杆菌 | 第37-38页 |
2.2.8 互补载体的构建及水稻基因转化 | 第38-40页 |
2.2.9 潮霉素抗性鉴定与转基因阳性苗的鉴定 | 第40-41页 |
2.2.10 减数分裂时期染色体的制备 | 第41页 |
2.2.11 荧光原位杂交实验 | 第41-43页 |
2.2.12 染色体蛋白质免疫检测 | 第43-44页 |
第三章 结果与分析 | 第44-69页 |
3.1 Osxrcc3-1突变体的分离 | 第44-45页 |
3.2 突变体的遗传分析 | 第45-46页 |
3.3 OsXRCC3基因的图位克隆 | 第46-52页 |
3.4 功能互补验证 | 第52-53页 |
3.5 OsXRCC3基因的突变导致减数分裂发生异常 | 第53-56页 |
3.6 在Osxrcc3-1突变体中同源染色体不能配对 | 第56-57页 |
3.7 在Osxrcc3-1突变体中,DSB能够正常形成 | 第57-59页 |
3.8 在Osxrcc3-1突变体中,联会复合体不能正常的装配 | 第59-62页 |
3.9 COM1,RAD51C和DMC1在染色体上的定位依赖于XRCC3 | 第62-63页 |
3.10 XRCC3对于MER3和ZIP4在染色体上的定位是必须的 | 第63-67页 |
3.11 OsXRCC3突变导致幼苗对丝裂霉素C敏感性增加 | 第67-69页 |
第四章 讨论 | 第69-72页 |
4.1 XRCC3蛋白在水稻同源染色体的联会和重组过程中起着非常重要的作用 | 第69页 |
4.2 在不同生物体中XRCC3功能的保守与分化 | 第69-70页 |
4.3 Osxrcc3突变体中可能发生了非同源染色体的重组 | 第70-72页 |
第五章 结论与展望 | 第72-73页 |
5.1 结论 | 第72页 |
5.2 研究展望 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-83页 |
附录 | 第83-85页 |
致谢 | 第85-87页 |
博士在读期间发表的论文 | 第87页 |
博士在读期间申请的专利 | 第87页 |