摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩略语 | 第9-12页 |
第一章 综述 | 第12-24页 |
1 引导组织再生膜的简介 | 第12-20页 |
1.1 引导组织再生膜的原理及发展 | 第12-13页 |
1.2 引导组织再生膜的分类 | 第13-18页 |
1.2.1 非可吸收膜 | 第13-14页 |
1.2.2 可吸收膜 | 第14-18页 |
1.3 组织诱导再生膜的发展 | 第18-20页 |
1.3.1 组织诱导再生膜制作工艺 | 第19-20页 |
2 壳聚糖及其衍生物在诱导组织再生膜中的应用 | 第20-22页 |
2.1 壳聚糖及其衍生物的加工特性 | 第20-21页 |
2.2 壳聚糖及其衍生物的降解性 | 第21页 |
2.3 壳聚糖及其衍生物的抗菌性 | 第21-22页 |
3 总结与展望 | 第22页 |
4 本论文的研究目的和意义 | 第22-24页 |
第二章 大鼠骨髓间充质干细胞的原代培养及材料的筛选 | 第24-33页 |
1. 实验材料和试剂 | 第24-25页 |
1.1 实验材料 | 第24-25页 |
1.2 主要仪器设备 | 第25页 |
1.3 主要实验试剂的配制 | 第25页 |
2. 实验方法 | 第25-27页 |
2.1 大鼠BMSCs的分离与培养 | 第25-26页 |
2.2 材料的筛选 | 第26-27页 |
2.2.1 材料的纯化 | 第26页 |
2.2.2 MIT实验 | 第26-27页 |
3 实验结果 | 第27-30页 |
3.1 BMSCs的原代培养 | 第27页 |
3.2 材料的筛选 | 第27-30页 |
4 讨论 | 第30-31页 |
5 本章小结 | 第31-33页 |
第三章 材料的性质及组织诱导再生膜的构建 | 第33-47页 |
1. 实验材料和试剂 | 第33-34页 |
1.1 实验材料 | 第33页 |
1.2 主要仪器 | 第33-34页 |
1.3 溶液的配制 | 第34页 |
2. 实验方法 | 第34-37页 |
2.1 CMCS膜片的制备与优化 | 第34-35页 |
2.1.1 CMCS膜片的制备 | 第34页 |
2.1.2 浸提液的制备 | 第34页 |
2.1.3 MTT法检测不同膜片毒性 | 第34-35页 |
2.2 膜片的物理性质 | 第35-36页 |
2.2.1 膜片的吸水率及溶胀比 | 第35页 |
2.2.2 膜片的空隙大小 | 第35页 |
2.2.3 膜片的机械性能 | 第35-36页 |
2.3 材料的生物相容性和生物降解性 | 第36-37页 |
2.3.1 膜片的制备 | 第36页 |
2.3.2 膜片的细胞相容性实验 | 第36页 |
2.3.3 膜片体内植入实验 | 第36-37页 |
3. 实验结果 | 第37-44页 |
3.1 MTT法确定纳米羟基磷灰石的比例 | 第37-39页 |
3.2 膜片的物理性质 | 第39-40页 |
3.3 CMCS膜片的生物相容性和生物降解性 | 第40-44页 |
3.3.1 CMCS膜片的细胞相容性 | 第40-41页 |
3.3.2 CMCS/Nano-HA片的组织相容性 | 第41-42页 |
3.3.3 CMCS/Nano-HA膜片的生物降解性 | 第42-43页 |
3.3.4 组织切片观察 | 第43-44页 |
4 讨论 | 第44-46页 |
5 本章小结 | 第46-47页 |
第四章 羧甲基壳聚糖膜片对大鼠颅骨缺损的修复 | 第47-53页 |
1. 实验材料和试剂 | 第47-48页 |
1.1 实验材料 | 第47页 |
1.2 主要试剂及仪器 | 第47-48页 |
1.3 溶液的配制 | 第48页 |
2. 实验方法 | 第48-49页 |
2.1 CMCS/Nano-HA膜片的处理 | 第48页 |
2.3 CMCS/Nano-HA膜片用于大鼠颅骨缺损 | 第48-49页 |
2.3.1 大鼠颅骨缺损模型的建立 | 第48页 |
2.3.2 GTR膜的应用 | 第48-49页 |
2.3.3 动物处死后标本的获取和检测 | 第49页 |
3 结果 | 第49-51页 |
3.1 术后观察 | 第49-50页 |
3.2 组织学观察 | 第50-51页 |
4 讨论 | 第51-52页 |
5 本章小结 | 第52-53页 |
全文总结 | 第53-55页 |
论文创新点 | 第55页 |
不足与下部计划 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-64页 |
致谢 | 第64页 |