符号说明 | 第4-8页 |
中文摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9页 |
1 前言 | 第10-26页 |
1.1 淀粉 | 第10-23页 |
1.1.1 淀粉的组分和结构 | 第10-11页 |
1.1.2 淀粉的生物合成 | 第11-16页 |
1.1.2.1 叶片中淀粉的合成前体 | 第11-14页 |
1.1.2.2 支链淀粉的合成 | 第14页 |
1.1.2.3 直链淀粉的合成 | 第14-15页 |
1.1.2.4 淀粉合成的调控 | 第15-16页 |
1.1.3 淀粉的降解途径 | 第16-23页 |
1.1.3.1 葡聚糖短暂的磷酸化和去磷酸化过程 | 第16-18页 |
1.1.3.2 淀粉颗粒的降解 | 第18-20页 |
1.1.3.3 淀粉分解产物的代谢 | 第20-21页 |
1.1.3.4 植物中淀粉代谢的调控 | 第21-23页 |
1.2 糖信号调控植物的生长发育 | 第23-26页 |
2 材料与方法 | 第26-39页 |
2.1 实验材料 | 第26-28页 |
2.1.1 植物材料 | 第26页 |
2.1.2 菌株与载体 | 第26页 |
2.1.3 酶与各种生化试剂 | 第26-27页 |
2.1.3.1 各种酶 | 第26页 |
2.1.3.2 生化试剂 | 第26-27页 |
2.1.3.3 各种缓冲液及培养基配方 | 第27页 |
2.1.4 PCR引物 | 第27-28页 |
2.2 实验方法 | 第28-39页 |
2.2.1 植物基因组的提取 | 第28页 |
2.2.2 载体构建 | 第28-30页 |
2.2.2.1 PCR扩增目的片段 | 第28页 |
2.2.2.2 酶切反应和目的片段回收 | 第28-29页 |
2.2.2.3 琼脂糖凝胶回收反应 | 第29页 |
2.2.2.4 连接反应 | 第29-30页 |
2.2.2.5 菌落PCR | 第30页 |
2.2.2.6 酶切鉴定表达载体及测序 | 第30页 |
2.2.3 大肠杆菌感受态细胞的制备和转化 | 第30-31页 |
2.2.3.1 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第30-31页 |
2.2.3.2 大肠杆菌细胞的转化 | 第31页 |
2.2.4 大肠杆菌的质粒提取方法 | 第31-32页 |
2.2.5 根癌农杆菌GV3101感受态细胞的制备和转化 | 第32-33页 |
2.2.5.1 根癌农杆菌GV3101感受态细胞的制备 | 第32页 |
2.2.5.2 冻融法转化农杆菌细胞 | 第32-33页 |
2.2.6 拟南芥的转化及转基因拟南芥的鉴定 | 第33页 |
2.2.6.1 拟南芥的转化 | 第33页 |
2.2.6.2 转基因拟南芥的鉴定 | 第33页 |
2.2.7 拟南芥RNA的提取纯化与反转录 | 第33-35页 |
2.2.7.1 拟南芥RNA的提取 | 第33-34页 |
2.2.7.2 RNA的反转录 | 第34-35页 |
2.2.8 实时荧光定量PCR | 第35页 |
2.2.9 拟南芥幼苗子叶lugol's染色 | 第35-36页 |
2.2.9.1 植物材料准备 | 第35-36页 |
2.2.9.2 lugol's染液的配制方法 | 第36页 |
2.2.9.3 染色方法及照相 | 第36页 |
2.2.10 拟南芥幼苗根的NBT染色 | 第36页 |
2.2.10.1 NBT染液的配制方法 | 第36页 |
2.2.10.2 染色方法及照相 | 第36页 |
2.2.11 透射电镜制片观察 | 第36-39页 |
2.2.11.1 植物材料准备 | 第36-37页 |
2.2.11.2 植物材料处理 | 第37-38页 |
2.2.11.3 超薄切片制备 | 第38-39页 |
3 结果与分析 | 第39-52页 |
3.1 wxr1、wxr3突变体表型分析 | 第39-40页 |
3.2 外源正常浓度的糖供给和光能供给抑制突变体wxr1和wxr3的生长 | 第40-43页 |
3.3 突变体wxr1、wxr3子叶叶绿体发育缺陷,积累过多淀粉粒 | 第43-45页 |
3.4 WXR1和WXR3的表达有一定的生物节律性 | 第45-46页 |
3.5 突变体wxr1、wxr3的糖信号转导表达上调 | 第46-48页 |
3.6 WXR1、WXR3的突变影响了植物的光合作用 | 第48-50页 |
3.7 WXR1蛋白与KEAs蛋白可能会形成蛋白复合体 | 第50-51页 |
3.8 wxr1根尖ROS水平的降低影响了突变体根尖的发育 | 第51-52页 |
4 讨论 | 第52-53页 |
5 结论与展望 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-63页 |
致谢 | 第63页 |