| 致谢 | 第4-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-33页 |
| 1.1 甲壳动物内分泌调控系统的研究进展和现状 | 第15-20页 |
| 1.1.1 甲壳动物内分泌调控相关的内分泌器官 | 第15-16页 |
| 1.1.2 甲壳动物内分泌调控的相关激素 | 第16-18页 |
| 1.1.3 甲壳动物内分泌调控途径的相关假说 | 第18-20页 |
| 1.1.4 甲壳动物内分泌调控的环境影响因子 | 第20页 |
| 1.2 蜕皮过程的研究进展 | 第20-27页 |
| 1.2.1 蜕皮及蜕皮周期的分类 | 第20-22页 |
| 1.2.2 蜕皮过程及内分泌调控关系 | 第22-24页 |
| 1.2.3 昆虫的蜕皮调控机制与甲壳类的蜕皮机制 | 第24-26页 |
| 1.2.4 昆虫与甲壳动物的内分泌学(蜕皮与生长繁殖)比较 | 第26-27页 |
| 1.3 甲壳动物性别决定及性别分化研究进展 | 第27-29页 |
| 1.3.1 性别决定机制与性别分化的相关基因 | 第27-28页 |
| 1.3.2 虾类性别决定及性别分化的研究进展 | 第28-29页 |
| 1.4 甲壳动物内分泌调控及性别决定与性别分化的关系 | 第29-30页 |
| 1.5 本研究的目标及意义 | 第30-31页 |
| 1.6 本研究的主要内容和技术路线 | 第31-33页 |
| 第二章 脊尾白虾EH基因的鉴定及功能分析 | 第33-57页 |
| 2.1 材料和方法 | 第33-47页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 2.1.2 组织取样 | 第33页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第33-34页 |
| 2.1.4 实验仪器 | 第34-35页 |
| 2.1.5 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第35-36页 |
| 2.1.6 基因的克隆及序列分析 | 第36-38页 |
| 2.1.7 荧光实时定量PCR(quantitative PCR,qPCR) | 第38-39页 |
| 2.1.8 原位杂交 | 第39-44页 |
| 2.1.9 dsEH的合成 | 第44-45页 |
| 2.1.10 dsRNA与20E剂量的最优化 | 第45-46页 |
| 2.1.11 dsRNA与20E对蜕皮过程的影响 | 第46页 |
| 2.1.12 dsRNA与20E对蜕皮率的影响 | 第46-47页 |
| 2.2 结果与分析 | 第47-54页 |
| 2.2.1 脊尾白虾EH基因的鉴定、结构分析及亲缘关系分析 | 第47-49页 |
| 2.2.2 脊尾白虾EH基因在不同组织的表达特征分析 | 第49-50页 |
| 2.2.3 脊尾白虾EH基因在不同蜕皮阶段的表达特征分析 | 第50-51页 |
| 2.2.4 脊尾白虾dsEH干扰或20E激素注射对EH基因的表达特征分析 | 第51-52页 |
| 2.2.5 脊尾白虾dsEH干扰或20E激素注射对蜕皮过程的影响 | 第52-53页 |
| 2.2.6 脊尾白虾dsEH干扰或20E激素注射对蜕皮率的影响 | 第53-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-57页 |
| 第三章 脊尾白虾IAG基因的鉴定及功能分析 | 第57-73页 |
| 3.1 材料与方法 | 第57-63页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第57页 |
| 3.1.2 组织取样 | 第57页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第57页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第57-58页 |
| 3.1.5 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第58页 |
| 3.1.6 基因克隆及序列分析 | 第58-59页 |
| 3.1.7 定量PCR(qPCR检测) | 第59-60页 |
| 3.1.8 原位杂交 | 第60-61页 |
| 3.1.9 dsIAG的合成 | 第61-62页 |
| 3.1.10 dsRNA干扰剂量最优化 | 第62页 |
| 3.1.11 眼柄切除之后,AG的形态学观察,组织定位及IAG表达变化 | 第62-63页 |
| 3.2 结果与分析 | 第63-70页 |
| 3.2.1 脊尾白虾IAG基因的鉴定、结构分析及亲缘关系分析 | 第63-66页 |
| 3.2.2 脊尾白虾IAG基因在不同组织的表达特征分析 | 第66-67页 |
| 3.2.3 脊尾白虾IAG基因在早期不同发育时期中的表达特征分析 | 第67-68页 |
| 3.2.4 脊尾白虾的眼柄摘除,AG的形态学观察、组织定位及表达特征 | 第68-70页 |
| 3.3 讨论 | 第70-73页 |
| 第四章 脊尾白虾Sox9基因的鉴定及功能分析 | 第73-87页 |
| 4.1 材料与方法 | 第73-78页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第73页 |
| 4.1.2 组织取样 | 第73页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第73页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第73页 |
| 4.1.5 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第73-74页 |
| 4.1.6 基因克隆及序列分析 | 第74-76页 |
| 4.1.7 定量PCR(RT-qPCR检测) | 第76-77页 |
| 4.1.8 dsSox9的合成 | 第77页 |
| 4.1.9 dsSox9干扰剂量的最优化 | 第77-78页 |
| 4.2 结果与分析 | 第78-85页 |
| 4.2.1 脊尾白虾Sox9基因的鉴定、结构分析及亲缘关系分析 | 第78-81页 |
| 4.2.2 脊尾白虾Sox9基因在不同组织的表达特征分析 | 第81-82页 |
| 4.2.3 脊尾白虾Sox9基因在早期不同发育时期中的表达特征分析 | 第82-83页 |
| 4.2.4 脊尾白虾Sox9基因在雄性脊尾白虾促雄性腺的表达特征分析 | 第83-84页 |
| 4.2.5 脊尾白虾dsSox9及dsIAG梯度剂量最优化及相互调控关系 | 第84-85页 |
| 4.3 讨论 | 第85-87页 |
| 结论 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-105页 |
| 个人简历 | 第105-107页 |
| 硕士期间发表论文与研究成果 | 第107页 |
