| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-27页 |
| 1.1 DNAzyme的结构及原理 | 第11-12页 |
| 1.2 DNAzyme的种类 | 第12-15页 |
| 1.3 DNAzyme的研究现状及应用 | 第15-18页 |
| 1.3.1 DNAzyme用于检测Pb~(2+) | 第15-16页 |
| 1.3.2 DNAzyme用于检测其他金属离子 | 第16-18页 |
| 1.3.3 DNAzyme用于检测其他物质 | 第18页 |
| 1.4 DNAzyme的应用前景 | 第18-19页 |
| 1.5 石墨烯的结构及应用原理 | 第19-25页 |
| 1.5.1 石墨烯用于DNA检测 | 第20-21页 |
| 1.5.2 石墨烯用于离子检测 | 第21-22页 |
| 1.5.3 石墨烯用于蛋白质和生物分子检测 | 第22-23页 |
| 1.5.4 基于石墨烯的体内检测 | 第23-24页 |
| 1.5.5 基于石墨烯的病原体和细胞的检测 | 第24-25页 |
| 1.6 石墨烯应用于分子检测的前景及挑战 | 第25页 |
| 1.7 本文的选题背景和研究意义 | 第25-26页 |
| 1.8 本文拟开展的工作 | 第26-27页 |
| 第2章 基于DNAzyme和r GO的超灵敏Pb~(2+)荧光检测 | 第27-36页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-29页 |
| 2.2.1 实验设计原理 | 第27-28页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第29页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第29-35页 |
| 2.3.1 GO与r GO的表征 | 第29-30页 |
| 2.3.2 不同长度的底物对DNAzyme切割的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 试验的可行性分析 | 第31页 |
| 2.3.4 GO和r GO淬灭效果对比 | 第31-32页 |
| 2.3.5 实验条件的优化 | 第32-33页 |
| 2.3.6 特异性实验 | 第33-34页 |
| 2.3.7 在反应缓冲液中对Pb~(2+)的检测性能 | 第34-35页 |
| 2.3.8 在血清中对Pb~(2+)的检测性能 | 第35页 |
| 2.4 小结 | 第35-36页 |
| 第3章 基于DNAzyme荧光信号扩增的RNase H活性荧光检测 | 第36-54页 |
| 3.1 前言 | 第36-37页 |
| 3.2 实验部分 | 第37-42页 |
| 3.2.1 基于DNAzyme荧光信号扩增的RNase H检测原理 | 第37-38页 |
| 3.2.2 试剂与仪器 | 第38-39页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第39-42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-53页 |
| 3.3.1 DNAzyme辅助因子筛选及实验可行性分析 | 第42-43页 |
| 3.3.2 实验条件的优化 | 第43-45页 |
| 3.3.3 特异性分析 | 第45-46页 |
| 3.3.4 对RNase H活性的检测性能 | 第46-47页 |
| 3.3.5 RNase H在复杂样本中的检测 | 第47-49页 |
| 3.3.6 天然药物筛选 | 第49页 |
| 3.3.7 对Mg2+的检测性能 | 第49-50页 |
| 3.3.8 在血清中对Mg2+的检测性能 | 第50-51页 |
| 3.3.9 不同抗生素对DNAzyme的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.10 传感器用于检测DNAzyme | 第52-53页 |
| 3.4 小结 | 第53-54页 |
| 结论与展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 附录 攻读硕士学位期间参与发表论文和专利 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
