| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-25页 |
| 一 乳腺癌标本中PRMT5表达水平的鉴定 | 第25-40页 |
| 1 材料 | 第26-27页 |
| 1.1 组织标本和组织芯片 | 第26页 |
| 1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 1.3 仪器设备 | 第26-27页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-30页 |
| 2.1 新鲜乳腺癌组织蛋白的提取 | 第27页 |
| 2.2 蛋白定量及电泳样品制备 | 第27-28页 |
| 2.3 Western-blot电泳 | 第28-29页 |
| 2.4 免疫组织化学染色 | 第29-30页 |
| 2.5 免疫组化染色结果的组织学评分 | 第30页 |
| 2.6 统计学分析 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-38页 |
| 3.1 乳腺癌组织中PRMT5的表达情况 | 第30-35页 |
| 3.2 PRMT5和Ki-67 在乳腺癌组织标本中的关系 | 第35-36页 |
| 3.3 PRMT5与乳腺癌转移的相关性 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 二 PRMT5与乳腺癌患者预后的相关性 | 第40-44页 |
| 1 方法 | 第40-41页 |
| 1.1 利用TCGA数据库数据进行分析 | 第40-41页 |
| 1.2 统计学分析 | 第41页 |
| 2 结果 | 第41-43页 |
| 2.1 PRMT5与乳腺癌患者预后的相关性 | 第41-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 三 PRMT5影响乳腺癌患者预后的机制浅探 | 第44-57页 |
| 1 材料 | 第44-46页 |
| 1.1 实验细胞 | 第44页 |
| 1.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 1.3 仪器设备 | 第45-46页 |
| 1.4 主要缓冲液 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-49页 |
| 2.1 MDA-MB231PRMT5和MDA-MB231shPRMT5细胞的构建和鉴定 | 第46页 |
| 2.2 细胞蛋白的提取 | 第46-47页 |
| 2.3 蛋白定量及电泳样品制备 | 第47页 |
| 2.4 Western-blot电泳 | 第47页 |
| 2.5 MTT实验 | 第47-48页 |
| 2.6 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第48页 |
| 2.7 流式细胞术检测细胞周期 | 第48-49页 |
| 2.8 统计学分析 | 第49页 |
| 3 结果 | 第49-55页 |
| 3.1 PRMT5过表达促进乳腺癌MDA-MB-231 细胞增殖 | 第49-51页 |
| 3.2 PRMT5敲除可抑制乳腺癌MDA-MB-231 细胞增殖 | 第51-52页 |
| 3.3 PRMT5过表达对乳腺癌MDA-MB-231 细胞周期和细胞凋亡的影响 | 第52-53页 |
| 3.4 PRMT5敲除对乳腺癌MDA-MB-231 细胞周期和细胞凋亡的影响 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 小结 | 第57-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 个人简历和研究成果 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
