| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 缩略词一览表 | 第16-17页 |
| 第一章 综述 | 第17-25页 |
| 1.1 引言 | 第17-18页 |
| 1.2 有机磷农药的神经发育毒性 | 第18-19页 |
| 1.2.1 老年性疾病的发生 | 第19页 |
| 1.3 多巴胺能神经元的发育 | 第19-20页 |
| 1.4 纹状体发育 | 第20-23页 |
| 1.4.1 神经元与胶质细胞的联系 | 第22-23页 |
| 1.5 组织三维重构研究 | 第23页 |
| 1.6 研究内容及其创新点 | 第23-25页 |
| 第二章 毒死蜱暴露对胚胎脑神经细胞的影响 | 第25-43页 |
| 前言 | 第25页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 实验试剂与仪器 | 第25-27页 |
| 2.1.3 实验试剂的配置 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第27-28页 |
| 2.2.1.1 实验分组及药物处理 | 第28页 |
| 2.2.1.2 定时胚胎的获取 | 第28页 |
| 2.2.2 石蜡切片 | 第28-29页 |
| 2.2.3 焦油紫染色 | 第29-30页 |
| 2.2.4 脑部定位 | 第30-31页 |
| 2.2.5 区域计数 | 第31页 |
| 2.2.6 统计分析 | 第31-32页 |
| 2.3 结果分析 | 第32-41页 |
| 2.3.1 CPF暴露对纹状体神经细胞的影响 | 第32-35页 |
| 2.3.2 CPF暴露对腹侧被盖区神经细胞的影响 | 第35-38页 |
| 2.3.3 CPF暴露对黒质神经细胞的影响 | 第38-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41页 |
| 2.5 讨论 | 第41-43页 |
| 第三章 毒死蜱暴露对胚胎脑多巴胺能神经元的影响 | 第43-54页 |
| 前言 | 第43页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第43-45页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第43页 |
| 3.1.2 实验试剂与仪器 | 第43-44页 |
| 3.1.3 实验试剂的配置 | 第44-45页 |
| 3.2 实验方法 | 第45-48页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第45页 |
| 3.2.1.1 实验分组及药物处理 | 第45页 |
| 3.1.1.2 定时胚胎的获取 | 第45页 |
| 3.2.2 石蜡切片 | 第45-46页 |
| 3.2.3 TH的免疫荧光 | 第46-47页 |
| 3.2.4 脑部定位 | 第47页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第47-48页 |
| 3.3 结果分析 | 第48-52页 |
| 3.3.1 CPF暴露对胚胎脑多巴胺能神经元的影响 | 第48-52页 |
| 3.3.2 本章小结 | 第52页 |
| 3.4 讨论 | 第52-54页 |
| 第四章 毒死蜱对胚胎纹状体三维结构的影响 | 第54-65页 |
| 前言 | 第54页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第54-55页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 4.1.2 实验试剂与仪器 | 第54-55页 |
| 4.2 实验方法 | 第55-58页 |
| 4.2.1 实验分组、药物处理及胚胎样本的采集 | 第55页 |
| 4.2.2 脑部定位及石蜡切片 | 第55-56页 |
| 4.2.3 Nissl染色 | 第56页 |
| 4.2.4 Olympus拍照 | 第56页 |
| 4.2.5 三维重构 | 第56-58页 |
| 4.3 结果 | 第58-63页 |
| 4.3.1 组织切片图 | 第58-59页 |
| 4.3.2 纹状体三维重构模型 | 第59-61页 |
| 4.3.3 CPF对纹状体三维结构的影响 | 第61-63页 |
| 4.3.3.1 三种重建模式对比 | 第61-63页 |
| 4.3.3.2 本章小结 | 第63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 硕士期间发表的学术论文 | 第76页 |