| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-25页 |
| 1.1 CBL和CIPK的蛋白结构及其互作机制 | 第12-14页 |
| 1.2 CBL和CIPK家族成员的分类和表达模式 | 第14-17页 |
| 1.3 拟南芥中CBL-CIPK信号通路的生理功能 | 第17-21页 |
| 1.3.1 细胞膜定位的CBL-CIPK通路 | 第18-20页 |
| 1.3.2 液泡膜定位的CBL-CIPK信号通路 | 第20-21页 |
| 1.4 CBL-CIPK信号通路的研究展望 | 第21-23页 |
| 1.5 本论文的立题依据及创新点 | 第23-25页 |
| 第二章 林烟草NsylCBL10基因及其启动子功能分析 | 第25-40页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 植物材料的培养 | 第25-26页 |
| 2.2.2 实验试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.2.3 植物组织DNA提取 | 第27页 |
| 2.2.4 纯合转基因材料的获得 | 第27页 |
| 2.2.5 GUS组织化学染色实验 | 第27-28页 |
| 2.2.6 叶绿素含量测定 | 第28页 |
| 2.3 引物序列 | 第28页 |
| 2.4 结果与分析 | 第28-38页 |
| 2.4.1 林烟草NsylCBL10相关材料在不同非生物胁迫下的表型分析 | 第28-31页 |
| 2.4.2 林烟草NsylCBL10基因启动子的序列分析 | 第31-35页 |
| 2.4.3 烟草纯合NsylCBL10pro::GUS转基因株系的筛选 | 第35页 |
| 2.4.4 NsylCBL10pro::GUS转基因烟草的组织化学染色分析 | 第35-36页 |
| 2.4.5 烟草幼苗下胚轴NsylCBL10启动子活性受光信号调节 | 第36-38页 |
| 2.5 讨论 | 第38-40页 |
| 2.5.1 NsylCBL10和AtCBL10过表达株系的表型差异分析 | 第38页 |
| 2.5.2 NsylCBL10启动子在不同生长期的组织特异活性分析 | 第38-39页 |
| 2.5.3 NsylCBL10启动子在幼苗下胚轴的光诱导活性分析 | 第39-40页 |
| 第三章 林烟草NsylCBL5基因及其启动子功能分析 | 第40-53页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第40页 |
| 3.1.2 菌株和载体 | 第40页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第40-41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-46页 |
| 3.2.1 植物材料的培养 | 第41页 |
| 3.2.2 实验试剂的配制 | 第41-42页 |
| 3.2.3 载体构建相关实验 | 第42-43页 |
| 3.2.4 农杆菌介导的遗传转化实验 | 第43-44页 |
| 3.2.5 植物组织DNA提取及纯合转基因材料的获得 | 第44页 |
| 3.2.6 基因转录水平的表达检测 | 第44-45页 |
| 3.2.7 蛋白亚细胞定位实验 | 第45-46页 |
| 3.3 引物序列 | 第46-47页 |
| 3.4 结果与分析 | 第47-52页 |
| 3.4.1 NsylCBL5的克隆及基因结构分析 | 第47页 |
| 3.4.2 NsylCBL5亚细胞定位分析 | 第47-48页 |
| 3.4.3 基因敲除突变体cbl5的获得及其盐胁迫表型检测 | 第48-49页 |
| 3.4.4 纯合NsylCBL5过表达株系的获得及其盐胁迫表型检测 | 第49-50页 |
| 3.4.5 NsylCBL5启动子的克隆、分析及与GUS基因的融合表达 | 第50-52页 |
| 3.5 讨论 | 第52-53页 |
| 3.5.1 cbl5和NsylCBL5过表达株系在高盐胁迫下的表型分析 | 第52页 |
| 3.5.2 NsylCBL5启动子顺式作用元件分析 | 第52-53页 |
| 第四章 全文结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简历 | 第62页 |
