| 摘要 | 第11-14页 |
| Abstract | 第14-17页 |
| 符号与缩略语说明 | 第18-20页 |
| 文献综述 | 第20-59页 |
| 第一章 我国工业废水排、治及生物处理技术概述 | 第20-39页 |
| 1 我国工业废水排、治概况 | 第21-23页 |
| 1.1 工业废水仍然是我国水环境污染的重要污染源 | 第21-22页 |
| 1.2 水污染严重的几个传统行业在国民经济中仍居主要地位 | 第22-23页 |
| 2 废水生物处理技术概述 | 第23-35页 |
| 2.1 废水的好氧生物处理技术 | 第23-31页 |
| 2.1.1 活性污泥法 | 第23-26页 |
| 2.1.2 好氧生物处理技术进展 | 第26-31页 |
| 2.2 废水的厌氧生物处理技术 | 第31-34页 |
| 2.2.1 废水厌氧生物处理技术的产生与发展 | 第31-32页 |
| 2.2.2 厌氧生物反应器与工艺 | 第32-34页 |
| 2.3 废水的生态处理技术 | 第34-35页 |
| 2.3.1 氧化塘 | 第34页 |
| 2.3.2 人工湿地处理系统 | 第34页 |
| 2.3.3 土地处理系统 | 第34-35页 |
| 3 本章小结 | 第35页 |
| 参考文献 | 第35-39页 |
| 第二章 微生态研究中的分子生物学方法及生物强化在活性污泥处理系统中的应用 | 第39-59页 |
| 1 废(污)水处理系统中微生态研究的分子生物学方法 | 第39-49页 |
| 1.1 基于聚合酶链反应技术的群落总DNA指纹图谱分析 | 第39-43页 |
| 1.1.1 梯度凝胶电泳分析 | 第41页 |
| 1.1.2 单链构象多态性分析 | 第41-42页 |
| 1.1.3 扩增核糖体DNA限制性分析 | 第42页 |
| 1.1.4 末端荧光标记限制性片段长度多态性分析 | 第42页 |
| 1.1.5 随机扩增多态性DNA分析 | 第42-43页 |
| 1.1.6 核糖体基因间隔序列分析 | 第43页 |
| 1.2 核酸杂交分析技术 | 第43-45页 |
| 1.3 报告基因监测技术 | 第45-46页 |
| 1.4 生物标志物法 | 第46-47页 |
| 1.4.1 脂肪酸类图谱分析 | 第46页 |
| 1.4.2 醌指纹法分析 | 第46-47页 |
| 1.5 其他分析方法 | 第47-49页 |
| 1.5.1 Biolog板分析法 | 第47页 |
| 1.5.2 DNA生物传感器 | 第47-48页 |
| 1.5.3 稳定性同位素探测技术 | 第48-49页 |
| 2 生物强化在活性污泥处理系统中的应用 | 第49-52页 |
| 2.1 生物强化的定义及成功应用实例 | 第49-50页 |
| 2.2 衡量生物强化成败的标准及影响其实施效果的因素 | 第50-52页 |
| 2.2.1 接种物来源 | 第50-51页 |
| 2.2.2 聚凝能力 | 第51页 |
| 2.2.3 菌体密度 | 第51页 |
| 2.2.4 表型改观 | 第51页 |
| 2.2.5 其它可利用底物 | 第51-52页 |
| 2.2.6 土著微生物代谢产物 | 第52页 |
| 2.2.7 寄生及原生动物捕食 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 试验部分 | 第59-152页 |
| 第一章 SBR中邻硝基苯甲醛工业废水处理模型的构建及处理前后活性污泥变化的研究 | 第59-96页 |
| 1 材料与方法 | 第60-72页 |
| 1.1 供试样品 | 第60页 |
| 1.2 废水水质特征分析方法 | 第60-64页 |
| 1.2.1 总悬浮物的重量法测定 | 第60页 |
| 1.2.2 挥发性悬浮物的测定 | 第60页 |
| 1.2.3 COD_(Cr)测定 | 第60-61页 |
| 1.2.4 氨氮的纳氏比色法测定 | 第61-62页 |
| 1.2.5 总氮的测定(碱性过硫酸钾消解紫外分光光度法) | 第62页 |
| 1.2.6 总磷的测定(钼酸铵分光光度法) | 第62-63页 |
| 1.2.7 pH值的测定(玻璃电极法) | 第63页 |
| 1.2.8 色度的测定(稀释倍数法) | 第63页 |
| 1.2.9 水样中ONBA含量的测定 | 第63-64页 |
| 1.2.10 水样中部分有机物质的定性分析 | 第64页 |
| 1.3 ONBA急性毒性试验 | 第64页 |
| 1.3.1 试验方法 | 第64页 |
| 1.3.2 实验动物处理 | 第64页 |
| 1.3.3 剂量设计 | 第64页 |
| 1.3.4 半数致死剂量统计分析 | 第64页 |
| 1.4 SBR反应器中废水处理模型的构建 | 第64-66页 |
| 1.4.1 小试反应器的构建 | 第64-65页 |
| 1.4.2 SBR运行条件设定 | 第65-66页 |
| 1.5 处理前后反应器中活性污泥的变化 | 第66-72页 |
| 1.5.1 活性污泥的理化性质分析 | 第66-67页 |
| 1.5.2 活性污泥的扫描电子显微镜观察 | 第67-68页 |
| 1.5.3 活性污泥中微生物优势种群的分析 | 第68-72页 |
| 2 结果与讨论 | 第72-91页 |
| 2.1 ONBA工业废水水质分析 | 第72-73页 |
| 2.2 ONBA急性毒性分析 | 第73-76页 |
| 2.3 SBR反应器中废水处理模型的构建 | 第76-79页 |
| 2.3.1 HRT对TN和COD去除效率的影响 | 第76页 |
| 2.3.2 SRT对TN和COD去除效率的影响 | 第76-77页 |
| 2.3.3 动力学参数的确定 | 第77-78页 |
| 2.3.4 废水水处理模型的构建 | 第78-79页 |
| 2.4 处理前后SBR反应器中活性污泥的变化 | 第79-91页 |
| 2.4.1 活性污泥的理化性质分析 | 第79-80页 |
| 2.4.2 活性污泥相变化的扫描电子显微镜分析 | 第80-82页 |
| 2.4.3 活性污泥中微生物优势种群的分析 | 第82-91页 |
| 3 本章小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-96页 |
| 第二章 ONBA降解菌的分离、筛选、鉴定及降解特性研究 | 第96-123页 |
| 1 材料与方法 | 第96-103页 |
| 1.1 ONBA降解菌的富集、分离和筛选 | 第96-97页 |
| 1.2 ONBA降解菌的培养特征及分类地位鉴定 | 第97-100页 |
| 1.2.1 ONBA降解菌的培养特征及生理生化鉴定 | 第97页 |
| 1.2.2 降解菌株的电子显微镜成像拍摄 | 第97页 |
| 1.2.3 降解菌株16S rDNA序列的扩增及其系统发育分析 | 第97-98页 |
| 1.2.4 菌株G+C mol%的测定 | 第98-99页 |
| 1.2.5 DNA-DNA同源性测定 | 第99-100页 |
| 1.3 降解菌株ONBA-17的生长特性研究 | 第100-101页 |
| 1.3.1 温度、pH值、通气量、氮源和碳源对其生长的影响 | 第100页 |
| 1.3.2 NaCl浓度对降解菌株ONBA-17生长的影响 | 第100页 |
| 1.3.3 降解菌株ONBA-17最小抑制浓度测试 | 第100-101页 |
| 1.4 降解菌株ONBA-17的降解特性研究 | 第101页 |
| 1.4.1 菌株ONBA-17的芳香化合物降解谱调查 | 第101页 |
| 1.4.2 添加营养物质(葡萄糖和酵母粉)、接种量、通气量、pH和温度对其降解ONBA的影响 | 第101页 |
| 1.5 降解代谢途径推测 | 第101-102页 |
| 1.6 粗酶提取物作用特性的研究 | 第102-103页 |
| 1.6.1 粗酶液的提取 | 第102页 |
| 1.6.2 可溶性蛋白质含量的测定 | 第102页 |
| 1.6.3 粗酶液反应体系的建立 | 第102页 |
| 1.6.4 金属离子、EDTA和表面活性剂对酶活性的影响 | 第102页 |
| 1.6.5 酶的定域实验 | 第102-103页 |
| 1.7 质粒的检测 | 第103页 |
| 1.8 菌株ONBA-17的废水修复潜力测试 | 第103页 |
| 2 结果与讨论 | 第103-120页 |
| 2.1 ONBA降解菌株的富集、分离和筛选 | 第103-104页 |
| 2.2 降解菌株ONBA-17的培养特征及分类地位鉴定 | 第104-108页 |
| 2.2.1 菌株ONBA-17的培养特征及生理生化鉴定 | 第104-106页 |
| 2.2.2 降解菌株ONBA-17的16S rDNA序列扩增及其系统发育分析 | 第106-108页 |
| 2.2.3 降解菌株ONBA-17的G+C mol%含量测定 | 第108页 |
| 2.2.4 DNA同源性分析结果 | 第108页 |
| 2.3 P.putida ONBA-17的生长特性研究 | 第108-112页 |
| 2.3.1 温度对其生长的影响 | 第108-109页 |
| 2.3.2 pH对其生长的影响 | 第109页 |
| 2.3.3 通气量对其生长的影响 | 第109页 |
| 2.3.4 碳、氮源对其生长的影响 | 第109-110页 |
| 2.3.5 氯化钠浓度对其生长的影响 | 第110-111页 |
| 2.3.6 MICs测试 | 第111-112页 |
| 2.4 P.putida ONBA-17的降解特性研究 | 第112-115页 |
| 2.4.1 菌株ONBA-17的芳香化合物降解谱调查 | 第112页 |
| 2.4.2 添加营养物质(葡萄糖和酵母粉)、接种量、通气量、pH和温度对其降解ONBA的影响 | 第112-115页 |
| 2.5 代谢途径初探 | 第115-116页 |
| 2.6 粗酶提取物作用特性的研究 | 第116-119页 |
| 2.6.1 粗酶液反应体系的建立 | 第116-118页 |
| 2.6.2 金属离子、EDTA和表面活性剂对酶活性的影响 | 第118-119页 |
| 2.6.3 酶的定域研究 | 第119页 |
| 2.7 质粒的检测 | 第119页 |
| 2.8 菌株ONBA-17的废水修复潜力测试 | 第119-120页 |
| 3 本章小结 | 第120-121页 |
| 参考文献 | 第121-123页 |
| 第三章 SBR系统中ONBA降解菌Pseudomonas putida ONBA-17的生物强化应用 | 第123-141页 |
| 1 材料与方法 | 第123-128页 |
| 1.1 材料 | 第123页 |
| 1.1.1 菌株、质粒 | 第123页 |
| 1.1.2 酶和试剂 | 第123页 |
| 1.1.3 抗生素及使用浓度 | 第123页 |
| 1.2 方法 | 第123-128页 |
| 1.2.1 ONBA降解菌P.sp ONBA-17的gfp标记 | 第123-126页 |
| 1.2.2 SBR反应器的设置和运行 | 第126-127页 |
| 1.2.3 菌体计数 | 第127页 |
| 1.2.4 反应器处理效果分析 | 第127页 |
| 1.2.5 激光共聚焦显微镜观测 | 第127页 |
| 1.2.6 污泥中微生物区系的DGGE分析 | 第127页 |
| 1.2.7 核酸序列登录 | 第127-128页 |
| 2 结果与讨论 | 第128-137页 |
| 2.1 ONBA降解菌P.putida ONBA-17的gfp标记 | 第128-130页 |
| 2.1.1 gfp的获取 | 第128页 |
| 2.1.2 同源重组载体的构建 | 第128-130页 |
| 2.1.3 三亲接合及稳定性验证 | 第130页 |
| 2.2 生物强化效果分析 | 第130-132页 |
| 2.2.1 COD和ONBA去除情况分析 | 第130-132页 |
| 2.2.2 反应系统中污泥沉降性能的变化 | 第132页 |
| 2.3 ONBA-17gfp的存活情况 | 第132-133页 |
| 2.4 污泥微生物区系的DGGE分析 | 第133-135页 |
| 2.5 生物强化部分的深入讨论 | 第135-137页 |
| 2.6 后续研究建议 | 第137页 |
| 3 本章小结 | 第137-138页 |
| 参考文献 | 第138-141页 |
| 第四章 生物强化系统中微生物的分离、鉴定及特性研究 | 第141-152页 |
| 1 材料与方法 | 第141-143页 |
| 1.1 菌株的分离 | 第141页 |
| 1.2 菌株的鉴定 | 第141-142页 |
| 1.2.1 菌株的培养特征及生理生化鉴定 | 第141页 |
| 1.2.2 菌株16S rDNA序列的获得及分析 | 第141-142页 |
| 1.2.3 核酸序列登录 | 第142页 |
| 1.3 菌株的絮凝、疏水、成膜及ONBA降解能力测试 | 第142页 |
| 1.3.1 菌株聚凝能力测试 | 第142页 |
| 1.3.2 菌体细胞表面疏水性能测试 | 第142页 |
| 1.3.3 菌株成膜能力测试 | 第142页 |
| 1.3.4 菌株ONBA降解能力测试 | 第142页 |
| 1.4 菌株促增现象解析 | 第142-143页 |
| 1.4.1 菌体碳源利用情况分析 | 第142页 |
| 1.4.2 菌体培养液的GC-MS分析 | 第142-143页 |
| 2 结果与讨论 | 第143-150页 |
| 2.1 菌株的分离 | 第143-144页 |
| 2.2 菌株的鉴定 | 第144-146页 |
| 2.2.1 菌株的生理生化特点 | 第144页 |
| 2.2.2 基于部分16S rDNA序列的系统发育分析 | 第144-145页 |
| 2.2.3 与DGGE测序条带的聚类分析情况 | 第145-146页 |
| 2.3 菌株的絮凝、疏水、成膜及ONBA降解能力分析 | 第146-148页 |
| 2.3.1 聚凝能力分析 | 第146页 |
| 2.3.2 细胞表面疏水性能分析 | 第146-147页 |
| 2.3.3 菌株成膜能力测定 | 第147-148页 |
| 2.3.4 菌株ONBA降解能力的测定 | 第148页 |
| 2.4 菌株促增现象解析 | 第148-150页 |
| 2.4.1 菌株碳源利用情况分析 | 第148-149页 |
| 2.4.2 菌株培养液的GC-MS分析 | 第149-150页 |
| 3 本章小结 | 第150页 |
| 参考文献 | 第150-152页 |
| 全文总结 | 第152-154页 |
| 本论文的创新之处 | 第154-155页 |
| 附录Ⅰ 所用培养基及试剂配方 | 第155-157页 |
| 附录Ⅱ 研究中获得的相关DNA序列 | 第157-167页 |
| 致谢 | 第167-168页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第168页 |
