| 本文缩略词表 | 第9-10页 |
| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-42页 |
| 1 低温胁迫下植物抗寒生理机制研究进展 | 第17-23页 |
| 1.1 低温胁迫对植物膜系统稳定性的影响 | 第17-19页 |
| 1.2 低温胁迫对植物保护酶活性的影响 | 第19-21页 |
| 1.3 低温胁迫对植物渗透调节物质的影响 | 第21-23页 |
| 2 果树诱变育种研究进展 | 第23-26页 |
| 2.1 诱变育种手段 | 第23-24页 |
| 2.2 突变体筛选 | 第24-25页 |
| 2.3 突变体检测 | 第25-26页 |
| 3 火龙果组织培养研究进展 | 第26-27页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第27-28页 |
| 5 主要研究内容 | 第28-29页 |
| 6 技术路线 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-42页 |
| 第二章 低温胁迫下火龙果抗寒生理研究及抗寒性评价 | 第42-58页 |
| 1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 1.1 试验材料 | 第43页 |
| 1.2 低温处理 | 第43-44页 |
| 1.3 恢复生长试验 | 第44页 |
| 1.4 测定方法 | 第44-45页 |
| 1.5 综合评价方法 | 第45页 |
| 1.6 统计分析与数据处理 | 第45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-52页 |
| 2.1 成年树体上1年生枝条对低温胁迫的生理响应 | 第45-49页 |
| 2.1.1 低温胁迫下火龙果枝条REC及细胞伤害率动态变化 | 第45-46页 |
| 2.1.2 低温胁迫下火龙果枝条的半致死温度 | 第46页 |
| 2.1.3 低温胁迫对火龙果枝条恢复生长的影响 | 第46-47页 |
| 2.1.4 LT_(50)处理时间对火龙果枝条抗寒生理指标的影响 | 第47-49页 |
| 2.2 火龙果扦插幼苗对低温胁迫的生理响应 | 第49-52页 |
| 2.2.1 低温胁迫下火龙果扦插幼苗的REC变化 | 第49页 |
| 2.2.2 低温胁迫下火龙果扦插幼苗的可溶性糖含量变化 | 第49-50页 |
| 2.2.3 低温胁迫下火龙果扦插幼苗的可溶性蛋白含量变化 | 第50页 |
| 2.2.4 低温胁迫下火龙果扦插幼苗的脯氨酸含量变化 | 第50-51页 |
| 2.2.5 低温胁迫下火龙果扦插幼苗的MAD含量变化 | 第51页 |
| 2.2.6 抗寒性综合评价 | 第51-52页 |
| 2.2.7 火龙果扦插幼苗的恢复生长情况 | 第52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 3.1 成年树上1年生枝条对低温胁迫的生理响应 | 第52-53页 |
| 3.2 火龙果扦插幼苗对低温胁迫的生理响应 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 第三章 火龙果再生体系的建立及优化 | 第58-86页 |
| 1 材料与方法 | 第59-64页 |
| 1.1 材料 | 第59页 |
| 1.2 实验方法 | 第59-63页 |
| 1.2.1 防止外植体污染及褐化的研究 | 第59-60页 |
| 1.2.2 成年火龙果植株茎段愈伤组织诱导、增殖及分化研究 | 第60-62页 |
| 1.2.3 成年火龙果植株茎段直接诱导不定芽研究 | 第62-63页 |
| 1.2.4 火龙果无菌苗茎段愈伤组织诱导及分化研究 | 第63页 |
| 1.2.5 不定芽增殖培养研究 | 第63页 |
| 1.2.6 生根培养研究 | 第63页 |
| 1.2.7 炼苗与移栽 | 第63页 |
| 1.3 培养条件 | 第63-64页 |
| 1.4 统计分析与数据处理 | 第64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-81页 |
| 2.1 防止外植体污染及褐化的研究 | 第64-67页 |
| 2.1.1 不同表面灭菌方式对外植体褐化、污染及成活的影响 | 第64-65页 |
| 2.1.2 不同成熟度取样对外植体褐化、污染及成活的影响 | 第65-66页 |
| 2.1.3 不同基因型对外植体褐化、污染及成活的影响 | 第66页 |
| 2.1.4 不同取样时间对外植体褐化、污染及成活的影响 | 第66-67页 |
| 2.2 成年火龙果植株茎段愈伤组织诱导、增殖及分化研究 | 第67-72页 |
| 2.2.1 愈伤组织的诱导 | 第67-70页 |
| 2.2.2 愈伤组织的增殖 | 第70页 |
| 2.2.3 愈伤组织的分化 | 第70-72页 |
| 2.3 成年火龙果植株茎段直接诱导不定芽研究 | 第72-74页 |
| 2.3.1 不同生长调节剂浓度及配比对不定芽诱导的影响 | 第72-73页 |
| 2.3.2 不同基本培养基浓度及外植体类型对不定芽诱导的影响 | 第73页 |
| 2.3.3 不同基因型外植.体对不定芽诱导的影响 | 第73-74页 |
| 2.4 幼苗茎段愈伤组织诱导及分化研究 | 第74-78页 |
| 2.4.1 TDZ对幼苗茎段愈伤组织和不定芽诱导的影响 | 第74-75页 |
| 2.4.2 不同生长调节剂浓度及配比对幼苗茎段愈伤组织及不定芽诱导的影响 | 第75-76页 |
| 2.4.3 外植体接种方式对幼苗茎段愈伤组织和不定芽诱导的影响 | 第76-78页 |
| 2.5 不定芽增殖培养研究 | 第78-79页 |
| 2.6 生根培养研究 | 第79-80页 |
| 2.7 炼苗与移栽 | 第80-81页 |
| 3 讨论 | 第81-84页 |
| 3.1 防止外植体污染及褐化 | 第81-82页 |
| 3.2 成年火龙果植株茎段愈伤组织诱导、增殖及分化 | 第82页 |
| 3.3 成年火龙果植株茎段直接诱导不定芽 | 第82-83页 |
| 3.4 火龙果无菌苗茎段愈伤组织诱导及分化 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-86页 |
| 第四章 EMS离体诱变及其对低温胁迫的生理响应研究 | 第86-114页 |
| 1 材料与方法 | 第87-90页 |
| 1.1 材料 | 第87页 |
| 1.2 方法 | 第87-89页 |
| 1.2.1 EMS诱变处理 | 第87-88页 |
| 1.2.2 HYP筛选 | 第88页 |
| 1.2.3 拟变异植株的继代培养 | 第88-89页 |
| 1.2.4 低温诱导 | 第89页 |
| 1.3 拟变异植株的抗寒性生理检测 | 第89-90页 |
| 1.4 统计分析与数据处理 | 第90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-105页 |
| 2.1 EMS处理对诱变成活率的影响 | 第90-92页 |
| 2.1.1 EMS浓度和处理时间对诱变成活率的影响 | 第90-92页 |
| 2.1.2 无菌苗继代时间对诱变成活率的影响 | 第92页 |
| 2.2 EMS处理对不定芽分化的影响 | 第92-93页 |
| 2.3 不同浓度HYP对不定芽成活的影响 | 第93-94页 |
| 2.4 EMS诱变材料对低温处理的生理响应 | 第94-105页 |
| 2.4.1 EMS诱变材料对不同低温处理的生理响应 | 第94-98页 |
| 2.4.2 EMS诱变材料对4℃抗寒锻炼的生理响应 | 第98-102页 |
| 2.4.3 EMS诱变材料对0℃持续低温的生理响应 | 第102-105页 |
| 3 讨论 | 第105-110页 |
| 3.1 EMS处理对不定芽成活及生长的影响 | 第105-107页 |
| 3.2 HYP选择压对不定芽成活及生长的影响 | 第107页 |
| 3.3 EMS诱变材料对低温处理的生理响应 | 第107-110页 |
| 参考文献 | 第110-114页 |
| 第五章 ~(60)Coγ辐射诱变及对低温胁迫的生理响应研究 | 第114-129页 |
| 1 材料与方法 | 第115-117页 |
| 1.1 材料 | 第115页 |
| 1.2 方法 | 第115-116页 |
| 1.2.1 辐照处理 | 第115-116页 |
| 1.2.2 HYP共培养 | 第116页 |
| 1.2.3 拟变异植株的继代培养 | 第116页 |
| 1.2.4 低温诱导 | 第116页 |
| 1.3 拟变异植株的抗寒性检测 | 第116-117页 |
| 1.4 统计分析与数据处理 | 第117页 |
| 2 结果与分析 | 第117-122页 |
| 2.1 ~(60)Coγ辐照处理对幼苗成活率及分化的影响 | 第117-118页 |
| 2.2 ~(60)Coγ辐照处理对幼苗生长的影响 | 第118-119页 |
| 2.3 ~(60)Coγ辐射诱变材料对4℃抗寒锻炼的生理响应 | 第119-122页 |
| 2.3.1 REC对抗寒锻炼的生理响应 | 第119页 |
| 2.3.2 可溶性糖、可溶性蛋白、Pro和MDA对抗寒锻炼的生理响应 | 第119-121页 |
| 2.3.3 SOD、POD、CAT和APX酶活性对抗寒锻炼的生理响应 | 第121-122页 |
| 2.3.4 叶绿素和类胡萝卜素对抗寒锻炼的生理响应 | 第122页 |
| 3 讨论 | 第122-126页 |
| 3.1 不同辐照强度对无菌苗的成活及生长的影响 | 第122-123页 |
| 3.2 辐射诱变材料对4℃抗寒锻炼的生理响应 | 第123-126页 |
| 参考文献 | 第126-129页 |
| 第六章 火龙果抗寒突变体筛选及ISSR分析 | 第129-144页 |
| 1 材料与方法 | 第130-133页 |
| 1.1 材料 | 第130-131页 |
| 1.2 生理检测 | 第131页 |
| 1.3 分子检测 | 第131-132页 |
| 1.3.1 DNA提取及检测 | 第131-132页 |
| 1.3.2 PCR扩增及检测 | 第132页 |
| 1.4 数据处理及分析 | 第132-133页 |
| 2 结果与分析 | 第133-139页 |
| 2.1 突变体中REC和Pro含量变化 | 第133-134页 |
| 2.1.1 突变体的REC值变化 | 第133-134页 |
| 2.1.2 突变体的Pro含量变化 | 第134页 |
| 2.2 突变体的ISSR分析 | 第134-139页 |
| 2.2.1 DNA提取结果 | 第134-135页 |
| 2.2.2 ISSR标记的多态性分析 | 第135-137页 |
| 2.2.3 遗传距离和聚类分析 | 第137-139页 |
| 3 讨论 | 第139-140页 |
| 3.1 突变体中REC和Pro含量变化 | 第139页 |
| 3.2 突变体ISSR分子标记 | 第139-140页 |
| 参考文献 | 第140-144页 |
| 第七章 本研究的结论、创新点及展望 | 第144-148页 |
| 1 结论 | 第144-146页 |
| 2 本研究创新点 | 第146-147页 |
| 3 研究展望 | 第147-148页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文和参加的主要学术活动 | 第148-150页 |
| 致谢 | 第150页 |
