| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 缩略语表 | 第8-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-20页 |
| 1.1 花生过敏 | 第13-15页 |
| 1.1.1 花生过敏概况 | 第13页 |
| 1.1.2 花生过敏机理 | 第13-14页 |
| 1.1.3 花生过敏原的分类 | 第14页 |
| 1.1.4 Ara h 2 | 第14-15页 |
| 1.2 酶改性技术 | 第15-18页 |
| 1.2.1 酶改性技术简介 | 第15页 |
| 1.2.2 酶交联技术 | 第15-16页 |
| 1.2.3 多酚氧化酶催化交联机理 | 第16页 |
| 1.2.4 花生蛋白酶改性技术研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3 立题背景和研究内容 | 第18-20页 |
| 1.3.1 立题背景 | 第18-19页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 第2章 Ara h 2同源建模及结构分析 | 第20-27页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 Ara h 2同源建模 | 第20-23页 |
| 2.2.1 Ara h 2同源建模依据 | 第20-21页 |
| 2.2.2 Ara h 2同源建模过程 | 第21页 |
| 2.2.3 Ara h 2同源建模结果分析 | 第21-23页 |
| 2.3 Ara h 2过敏原表位和交联位点分析 | 第23-25页 |
| 2.3.1 Ara h 2过敏原表位分析 | 第23-24页 |
| 2.3.2 Ara h 2交联位点分析 | 第24-25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 第3章 花生过敏原Arah2的分离纯化及多酚氧化酶的制备 | 第27-35页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 材料与设备 | 第27-29页 |
| 3.2.1 试剂材料 | 第27页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第27-28页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-32页 |
| 3.3.1 花生过敏原Ara h 2的分离纯化 | 第29-31页 |
| 3.3.2 多酚氧化酶的提取 | 第31-32页 |
| 3.4 结果与分析 | 第32-33页 |
| 3.4.1 花生过敏原Ara h 2的纯度和得率 | 第32-33页 |
| 3.4.2 测定多酚氧化酶的酶活 | 第33页 |
| 3.5 讨论 | 第33-34页 |
| 3.5.1 关于花生Ara h 2的分离纯化 | 第33-34页 |
| 3.5.2 多酚氧化酶的提取工艺 | 第34页 |
| 3.6 本章小结 | 第34-35页 |
| 第4章 多酚氧化酶催化交联Ara h 2的条件研究 | 第35-47页 |
| 4.1 引言 | 第35页 |
| 4.2 材料与设备 | 第35-36页 |
| 4.2.1 试剂材料 | 第35页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第35页 |
| 4.2.3 溶液的配制 | 第35-36页 |
| 4.3 实验方法 | 第36-38页 |
| 4.3.1 单因素实验确定酶交联条件 | 第36-37页 |
| 4.3.2 酶交联反应的多因素实验 | 第37页 |
| 4.3.3 还原剂对交联Ara h 2的影响 | 第37-38页 |
| 4.4 结果与分析 | 第38-45页 |
| 4.4.1 单因素酶交联实验结果分析 | 第38-43页 |
| 4.4.2 酶交联多因素实验结果分析 | 第43页 |
| 4.4.3 还原剂对交联的影响 | 第43-45页 |
| 4.5 讨论 | 第45页 |
| 4.6 本章小结 | 第45-47页 |
| 第5章 花生Ara h 2交联产物的消化性评估及显微结构分析 | 第47-60页 |
| 5.1 引言 | 第47页 |
| 5.2 材料与设备 | 第47-49页 |
| 5.2.1 试剂材料 | 第47页 |
| 5.2.2 主要仪器设备 | 第47页 |
| 5.2.3 溶液配制 | 第47-49页 |
| 5.3 实验方法 | 第49-51页 |
| 5.3.1 交联产物的制备 | 第49页 |
| 5.3.2 体外模拟消化 | 第49-50页 |
| 5.3.3 激光粒度仪贿分析 | 第50页 |
| 5.3.4 环境扫描电子显微镜分析 | 第50-51页 |
| 5.4 结果与分析 | 第51-58页 |
| 5.4.1 体外模拟消化 | 第51-53页 |
| 5.4.2 Ara h 2及其交联产物的显微结构 | 第53-58页 |
| 5.5 讨论 | 第58-59页 |
| 5.5.1 关于Ara h 2的体外模拟消化 | 第58页 |
| 5.5.2 关于Ara h 2的显微结构分析 | 第58-59页 |
| 5.5.3 显微结构分析和消化性的关系 | 第59页 |
| 5.6 本章小结 | 第59-60页 |
| 第6章 花生Ara h 2致敏性评估 | 第60-72页 |
| 6.1 引言 | 第60页 |
| 6.2 材料和设备 | 第60-61页 |
| 6.2.1 试剂和材料 | 第60页 |
| 6.2.2 主要仪器设备 | 第60页 |
| 6.2.3 溶液配制 | 第60-61页 |
| 6.3 实验方法 | 第61-63页 |
| 6.3.1 样品制备 | 第61页 |
| 6.3.2 花生Ara h 2交联产物的IgG结合能力实验 | 第61-62页 |
| 6.3.3 花生Ara h 2交联产物的IgE结合能力实验 | 第62-63页 |
| 6.4 结果及分析 | 第63-69页 |
| 6.4.1 交联对花生Ara h 2抗原性的影响 | 第63-64页 |
| 6.4.2 交联对花生Ara h 2致敏性的影响 | 第64-65页 |
| 6.4.3 模拟消化后Ara h 2和交联产物致敏性的变化 | 第65-67页 |
| 6.4.4 消化性对花生Ara h 2和交联产物致敏性的影响 | 第67-68页 |
| 6.4.5 β-巯基乙醇控制酶交联对其致敏性的影响 | 第68-69页 |
| 6.5 讨论 | 第69-70页 |
| 6.5.1 关于交联对花生Ara h 2抗原性的影响 | 第69页 |
| 6.5.2 关于交联对花生Ara h 2致敏性的影响 | 第69-70页 |
| 6.5.3 交联花生蛋白Ara h 2显微结构与致敏性的关系 | 第70页 |
| 6.5.4 交联花生蛋白Ara h 2消化性与致敏性的关系 | 第70页 |
| 6.6 本章小结 | 第70-72页 |
| 第7章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 7.1 结论 | 第72-73页 |
| 7.2 创新点 | 第73页 |
| 7.3 展望 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 硕士期间研究成果 | 第79页 |
