| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、楸毒素对离体豚鼠心脏电生理的影响 | 第17-40页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第17页 |
| 1.1.4 液体配置 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-20页 |
| 1.2.1 分组与给药顺序 | 第17-18页 |
| 1.2.2 实验步骤 | 第18-19页 |
| 1.2.3 观测指标 | 第19页 |
| 1.2.4 数据处理 | 第19-20页 |
| 1.3 结果 | 第20-38页 |
| 1.3.1 MTX对豚鼠心脏心电图各指标的影响 | 第20-24页 |
| 1.3.2 MTX对多非利特造模的豚鼠心脏的电生理影响 | 第24-28页 |
| 1.3.3 MTX对低钾及诱导的豚鼠心脏电生理的影响 | 第28-33页 |
| 1.3.4 MTX对低钾与多非利特合并诱导的豚鼠心脏电生理影响 | 第33-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-40页 |
| 二、楸毒素对豚鼠心肌细胞动作电位的影响 | 第40-49页 |
| 2.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第40页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第40页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第40-41页 |
| 2.1.4 液体配置 | 第41页 |
| 2.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 2.2.1 实验分组 | 第41页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第41-43页 |
| 2.2.3 数据处理 | 第43页 |
| 2.3 结果 | 第43-48页 |
| 2.3.1 MTX对急性分离的豚鼠心肌细胞APD影响 | 第43-45页 |
| 2.3.2 MTX对Do诱导的豚鼠心肌细胞APD延长模型的影响 | 第45-47页 |
| 2.3.3 MTX对Do诱导的豚鼠心肌细胞APD延长模型的离散度影响 | 第47-48页 |
| 2.4 小结 | 第48-49页 |
| 三、楸毒素对hERG蛋白的作用 | 第49-57页 |
| 3.1 材料与方法 | 第49-50页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第49页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第49页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第49-50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第50页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第50-53页 |
| 3.2.3 数据处理 | 第53页 |
| 3.3 结果 | 第53-56页 |
| 3.3.1 western blot法检测氟西汀对hERG蛋白表达的抑制作用 | 第53-54页 |
| 3.3.2 western blot法检测MTX对hERG蛋白表达的作用 | 第54-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-57页 |
| 四、楸毒素对I_(ks)阻断剂Chromanol 293B诱导的LQT1的作用 | 第57-62页 |
| 4.1 对象和方法 | 第57页 |
| 4.2 实验方法 | 第57页 |
| 4.2.1 实验分组 | 第57页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第57页 |
| 4.3 结果 | 第57-61页 |
| 4.3.1 MTX对Chromanol 293B造模的豚鼠心脏电生理的影响 | 第57-60页 |
| 4.3.2 MTX对 293B诱导的豚鼠心肌细胞APD延长模型的影响 | 第60-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 讨论 | 第62-69页 |
| 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 | 第78-88页 |
| 综述参考文献 | 第83-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 个人简历 | 第89页 |
