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针对脑部Aβ42的双级靶向纳米递药系统的构建及对阿尔茨海默病的治疗研究

中文摘要第8-11页
ABSTRACT第11-14页
前言第15-21页
    参考文献第18-21页
第一部分 TGN、QSH修饰的聚乙二醇-聚乳酸纳米粒的构建及其双级靶向性评价第21-70页
    第一章 TGN、QSH修饰的聚乙二醇-聚乳酸纳米粒的制备、优化与表征第21-46页
        1 仪器和材料第22-25页
            1.1 仪器第22页
            1.2 材料和试剂第22-23页
            1.3 溶液配制第23-25页
        2 实验方法第25-31页
            2.1 PEG-PLA纳米粒(NP)的制备第25页
            2.2 不同TGN、QSH修饰密度的PEG-PLA纳米粒(TNP、QNP和TQNP)的制备第25-26页
            2.3 NP、TNP、QNP和TQNP的表征第26-27页
            2.4 载香豆素-6(Cou-6)纳米粒的制备第27页
            2.5 Cou-6体外分析方法的建立与评价第27-29页
            2.6 载Cou-6纳米粒的载药量和包封率的测定第29页
            2.7 载Cou-6的NP和TQNP的体外泄漏试验第29页
            2.8 载DiR纳米粒的制备第29页
            2.9 纳米粒表面多肽修饰密度的优化第29-31页
        3 实验结果第31-43页
            3.1 NP、TNP、QNP和TQNP的表征第31-32页
            3.2 纳米粒表面元素的XPS分析第32-33页
            3.3 TGN、QSH肽HPLC分析方法的建立与评价第33-35页
            3.4 Cou-6体外HPLC分析方法建立与评价第35-36页
            3.5 包封率和载药量的测定第36-37页
            3.6 体外泄漏试验第37页
            3.7 纳米粒表面多肽修饰密度的优化第37-43页
        4 讨论第43-44页
            4.1 纳米粒表面多肽修饰比例优化的必要性第43页
            4.2 Aβ42单体的制备方法第43页
            4.3 SPR技术优化纳米粒表面QSH的修饰密度第43-44页
        5 小结第44-45页
        参考文献第45-46页
    第二章 TGN、QSH修饰的聚乙二醇-聚乳酸纳米粒的双级靶向性验证及其细胞学考察第46-70页
        1 仪器和材料第46-48页
            1.1 仪器第46-47页
            1.2 材料和试剂第47页
            1.3 实验动物第47-48页
        2 实验方法第48-52页
            2.1 AD小鼠模型的构建第48页
            2.2 纳米粒与Aβ42体外结合特性的确证第48页
            2.3 离体成像观察纳米粒在AD模型小鼠脑内的分布第48-49页
            2.4 载Cou-6的纳米粒在AD模型小鼠脑内分布的定量测定第49-51页
            2.5 bEnd.3细胞对纳米粒摄取机制考察第51-52页
            2.6 纳米粒的细胞毒性考察第52页
        3 实验结果第52-65页
            3.1 纳米粒与Aβ42结合特性的确证第52-53页
            3.2 离体成像观察纳米粒在AD模型小鼠脑内的分布第53-54页
            3.3 载Cou-6的NP、T3NP和T3Q3NP的脑内分布定量测定第54-61页
            3.4 bEnd.3细胞对纳米粒摄取机制的考察第61-64页
            3.5 纳米粒的细胞毒性考察第64-65页
        4 讨论第65-67页
            4.1 AD模型小鼠的选择第65页
            4.2 T3Q3NP的双级靶向性探讨第65-66页
            4.3 纳米粒的细胞内吞途径及其研究意义第66-67页
            4.4 纳米粒细胞毒性考察的必要性及评价方法选择第67页
        5 小结第67-68页
        参考文献第68-70页
第二部分 载H102的双级靶向纳米粒的制备及其药效学评价第70-134页
    第一章 载H102的双级靶向纳米粒的制备和表征第70-83页
        1 仪器和材料第71页
            1.1 仪器第71页
            1.2 材料和试剂第71页
        2 实验方法第71-75页
            2.1 H102的体外分析方法建立与评价第71-72页
            2.2 载H102的纳米粒的制备第72-73页
            2.3 载H102的纳米粒的表征第73-74页
            2.4 NP/H102和TQNP/H102在血浆和脑匀浆中的稳定性第74-75页
            2.5 NP/H102和TQNP/H102体外释放研究第75页
        3 实验结果第75-81页
            3.1 H102体外分析方法的建立与评价第75-76页
            3.2 NP/H102制备工艺的初步优化第76-77页
            3.3 载H102纳米粒的表征第77-78页
            3.4 NP/H102和TQNP/H102在血浆和脑匀浆中的稳定性第78-80页
            3.5 NP/H102和TQNP/H102的体外释放第80-81页
        4 讨论第81页
            4.1 载H102的PEG-PLA纳米粒的制备方法第81页
        5 小结第81页
        参考文献第81-83页
    第二章 载H102的双级靶向纳米粒脑部递药特性研究第83-98页
        1 仪器和材料第83页
            1.1 仪器第83页
            1.2 材料和试剂第83页
            1.3 实验动物第83页
        2 实验方法第83-87页
            2.1 载H102肽的NP、TNP和TQNP的制备第83页
            2.2 H102体内LC-MS分析方法的建立与评价第83-86页
            2.3 纳米粒脑内递药特性研究第86-87页
        3 实验结果第87-96页
            3.1 LC-MS分析方法的建立及评价第87-90页
            3.2 载H102的NP、TNP和TQNP的脑内递药特性研究第90-96页
        4 讨论第96-97页
            4.1 H102体内浓度测定方法的选择第96页
            4.2 TQNP/H102的海马靶向性第96-97页
        5 小结第97页
        参考文献第97-98页
    第三章 载H102的双级靶向纳米粒的药效学研究第98-125页
        1 仪器和材料第98-101页
            1.1 仪器第98-99页
            1.2 材料和试剂第99页
            1.3 实验动物第99页
            1.4 溶液的配制第99-101页
        2 实验方法第101-107页
            2.1 NP/H102、TNP/H102、QNP/H102及TQNP/H102的制备第101页
            2.2 双侧海马内注射Aβ42构建小鼠痴呆模型第101页
            2.3 实验分组与治疗方案第101-102页
            2.4 小鼠Morris水迷宫试验第102-103页
            2.5 生化指标的测定第103-106页
            2.6 形态学观察第106-107页
            2.7 统计分析第107页
        3 实验结果第107-119页
            3.1 Morris水迷宫试验第107-111页
            3.2 生化指标测定第111-115页
            3.3 形态学观察第115-119页
        4 讨论第119-121页
            4.1 选用Morris水迷宫实验考察AD模型小鼠记忆功能的原因第119页
            4.2 测定胰岛素降解酶IDE及几种突触相关蛋白的意义第119-120页
            4.3 H102制剂对Aβ的抑制效果和对神经元的保护作用第120-121页
        5 小结第121页
        参考文献第121-125页
    第四章 载H102的双级靶向纳米粒体内安全性初步考察第125-134页
        1 仪器和试剂第125-126页
            1.1 仪器第125页
            1.2 材料和试剂第125页
            1.3 实验动物第125页
            1.4 溶液的配制第125-126页
        2 实验方法第126-127页
            2.1 NP/H102、TNP/H102、QNP/H102及TQNP/H102的制备第126页
            2.2 动物给药第126页
            2.3 石蜡包埋切片的制作及HE染色第126-127页
            2.4 纳米粒的血液学评价第127页
            2.5 纳米粒的肝肾毒性评价第127页
        3 实验结果第127-131页
            3.1 对主要脏器的病理组织观察第127-130页
            3.2 纳米粒的血液学评价第130-131页
            3.3 纳米粒的肝肾毒性评价第131页
        4 讨论第131-132页
            4.1 纳米制剂安全性评价的必要性第131-132页
        5 小结第132页
        参考文献第132-134页
全文总结第134-135页
课题的创新性第135-136页
附录第136-138页
致谢第138-139页

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